Аннотация и ключевые слова
Аннотация (русский):
Интенсивное развитие аквакультуры в Южном федеральном округе позволило добиться высоких показателей в производстве продукции аквакультуры (около 80 тыс. т за 2019 г.), при этом основное производство составляют карп и растительноядные рыбы. Введение в аквакультуру новых видов, таких как рыбец, позволит вывести на рынок продукт высокого качества. На юге России рыбец является одним из перспективных объектов для введения в аквакультуру. Донской рыбец (Vimba vimba (Linnaeus, 1758)) – ценный вид рыб, являющийся региональным деликатесом на Дону. Снижение уловов рыбца в последние годы (в 2015 г. в Азовском море они составляли 10,9 т, а в 2019 г. только 5,0 т) требует проведения исследований об эффективных направлениях в осуществлении нерестовой кампании и адаптации рыб к содержанию в установках замкнутого водоснабжения. Проведен эксперимент по проведению нереста адаптированных к содержанию в установках замкнутого водоснабжения производителей рыбца двумя методами: на субстрате (in vivo) и в аппарате Вейса (in vitro), выявлена эффективность использованных методов. В процессе эксперимента лучшие показатели инкубирования икры были получены в аппарате Вейса. На субстрате гибель икры составила около 80 %. Причиной гибели стало неравномерное распределение икры на субстрате. Проведено подращивание эмбрионов и личинок рыбца в специальном оборудовании – ваннах с проточной водой, – что позволило получить жизнеспособную личинку. Показано, что в специальных системах с проточной водой после перехода эмбрионов в личиночную стадию можно провести перевод личинок на активное внешнее питание. Общее развитие эмбрионов и личинок до мальковой стадии в эксперименте составило 55 суток.

Ключевые слова:
рыбец, производители, молодь, нерест, икра, эмбрионы, личинка, адаптация, инкубация
Текст
Текст произведения (PDF): Читать Скачать

Введение Рыбец является одним из перспективных объектов для введения в аквакультуру юга России. Промысловое стадо азовского рыбца никогда не отличалось высокими показателями величины запаса по сравнению с другими полупроходными рыбами, такими как тарань, судак, лещ, чехонь. В 60-х гг. прошлого столетия общий вылов рыбца в Азово-Кубанском и Азово-Донском районе достигал 92 т, а уже в 1985 г. снизился до 3 т [1]. Далее уловы рыбца, по бассейну, не поднимались выше 15 т, так, если в 2015 г. в Азовском море они составляли 10,9 т, то 2019 г. добыча упала к уровню 5,6 т [2]. Исторически рыбца выращивали только для целей воспроизводства, т. е. отлавливали производителей, получали от них половые продукты, инкубировали и подращивали личинок и молодь массой 1 г выпускали в естественные водоемы. На юге России выращиванием занимались Аксайско-Донское рыбоводное хозяйство в Ростовской области и рыбцово-шемайный завод в Краснодарском крае [3]. В настоящее время Донской рыбо-водный завод единственный на Юге России занимается искусственным воспроизводством рыбца и ежегодно выпускает в р. Дон порядка 4 млн шт. молоди [4]. За рубежом рыбца интенсивно выращивают в Польше, Венгрии и прибалтийских странах. Рыбец (сырть) обладает отличными вкусовыми качествами, и это по праву делает его одним из лучших рыбных деликатесов. Мясо рыбца относится к категории диетическое, на 100 г продукта содержит 17,5 г белка, 2,0 г жиров, 0,01 г углеводов и всего 88 килокалорий; в составе присутствует большое количество легкоусвояемого белка и аминокислот, таких как метионин, лизин, таурин, триптофан; хорошо сохраняет свои свойства при длительном хранении при низких температурах (заморозке). Рыбец хорош в вареном и в жареном виде. Наиболее вкусный и востребованный рыбец – в копченом и вяленом виде. Целью исследования является изучение показателей эффективности проведения нереста и адаптации донского рыбца (Vimba vimba) в искусственных условиях выращивания в специальных системах. Материалы и методы исследования Заготовка рыбца была произведена на нагульных участках ареала в восточной части Таганрогского залива в октябре 2019 г. при температуре воды 8–10 °С. Были отловлены половозрелые особи рыбца в возрасте 4-х и более лет в количестве 40 шт. Для содержания и подготовки производителей к нересту была использована установка замкнутого водоснабжения (УЗВ). Инъецирование производителей осуществляли с применением ацетонированного гипофиза карповых рыб (сазан). Дозировки препарата составили 4 мг гипофиза/кг массы тела самок, 3 мг гипофиза/кг массы тела самцов. Было инъецировано 5 самок и 7 самцов рыбца. Из них 3 самки и 4 самца были отсажены для нереста на субстрате, а у двух самок и 3-х самцов были взяты половые продукты для искусственного оплодотворения, с дальнейшей инкубацией in vitro. Оплодотворение икры осуществляли сухим способом по общепринятой методике [5]. Оплодотворенную икру обесклеивали при помощи молока, разбавленного водой в 5 раз, осторожно перемешивая пером, и оставляли для набухания в течение 1 часа. В первом эксперименте обесклеенную икру поместили на инкубацию в аппараты Вейса (in vitro). Во втором для нереста рыбца был ис-пользован искусственный субстрат в виде мелкоя-чеистой дели, уложенной в несколько слоев на дно нерестового бассейна (in vivo). Для статистической обработки полученных данных использовали программу Microsoft Office Excel. Результаты и обсуждение После отлова и транспортировки производители рыбца были помещены на 14 суток в карантинный бассейн с целью адаптации к температурному режиму установки для их дальнейшего содержания и подготовки к нересту, для чего был применен ступенчатый метод, с постепенным подъемом температуры до 15–18 ºС. После полной адаптации была проведена бонитировка производителей, результаты бонитировки представлены в табл. 1. Таблица 1 Table 1 Результаты бонитировки Bonitation results № пробы Длина АД, см Длина АС, см Длина АВ, см Масса тела полная, г Пол 1 22 23 25 200 ♂ 2 21 24 25 202 ♂ 3 22,1 23,7 26,6 202 ♂ 4 23,5 25 28 204 ♀ 5 22 24,5 27 204 ♀ 6 22 23,5 26,8 204 ♂ 7 22 24 26 206 ♂ 8 22 23 27 206 ♀ 9 22 23 26,5 206 ♂ 10 21 22,5 25,5 208 ♀ 11 23 24,5 27,5 210 ♂ 12 21 22,5 26 210 ♂ 13 24 25 29 212 ♂ 14 22 23,5 27,1 212 ♂ 15 23,5 25 28,2 214 ♀ 16 22,5 24 27,5 215 ♂ 17 22,5 23,5 27 216 ♀ 18 22 23,5 26,5 216 ♂ 19 22,5 24 27,5 218 ♂ 20 22,5 24,6 27,1 220 ♂ 21 23 24 27,5 220 ♀ 22 23 27 28 224 ♂ 23 23 24,5 26,5 226 ♀ 24 23 25 28 226 ♀ 25 22,5 24 27,5 228 ♂ 26 22,5 24 27 230 ♀ 27 22 23 28 232 ♂ 28 22,5 23,5 27 232 ♀ 29 24 25 29 234 ♀ 30 23,5 24 25,5 244 ♂ 31 23 24 27,5 244 ♂ 32 23 25 28 246 ♀ 33 23 25 28 248 ♀ 34 23 25,5 26 250 ♀ 35 24 25,5 29 260 ♂ 36 25 27 30 286 ♀ 37 23 25,5 28,5 292 ♂ 38 24,5 26 30 304 ♀ 39 25 27 29,5 310 ♀ 40 25 26,5 30 316 ♀ Для контроля зрелости были вскрыты несколько особей. По результатам вскрытия установлено, что гонады самцов перед зимовкой были на III, а гонады самок на III-IV стадии зрелости. Для проведения преднерестовой подготовки производителей рыбца была разработана схема моделирования температурного режима в зимний период (рис. 1). Рис. 1. График проведения искусственной зимовки производителей рыбца Fig. 1. Graph of conducting artificial wintering in vimba producers Период искусственной зимовки составил 60 су-ток. Искусственную зимовку проводили в специально оборудованных бассейнах УЗВ с поэтапным охлаждением воды. По окончании срока было проведено контрольное вскрытие самки и самца рыбца для определения качества икры. Установлено, что в результате проведения искусственной зимовки зрелость гонад увеличилась и рыбы были практически готовы к искусственному нересту (рис. 2, 3). Рис. 2. Гонады самки рыбца на IV стадии зрелости, перед гипофизарной инъекцией Fig. 2. Vimba female gonads at IV stage of maturity before hypophysial injection Рис. 3. Гонады самца рыбца на IV стадии зрелости, перед гипофизарной инъекцией Fig. 3. Vimba male gonads at IV stage of maturity before hypophysial injection В первом эксперименте, после получения и оплодотворения икры, ее инкубировали в аппаратах Вейса. Инкубация, до первого появления личинок, длилась 72 ч при температуре 18 °С. Выход эмбрионов составил около 75 % от заложенной икры. С появлением первых эмбрионов икру переместили в личиночную ванну, представлявшую собой пластиковый контейнер с помещенной в него рамой, обтянутой сеткой с ячеей 1,5 мм (рис. 4). Рис. 4. Ванна для личиночного подращивания рыбца Fig. 4. A bath for growing vimba larvae В ванной икру распределили ровным слоем на сетку, погруженную в воду на глубину 3–4 см. Ванны обеспечивались проточной водой с полным водообменом один раз в 2 ч. Расход воды регулировался со стороны подачи воды, через запорный клапан. Вылупившиеся эмбрионы сквозь ячею сетки падали на дно ванны. По окончании выклева сетку убирали вместе с частью оболочек, невыклюнувшимися эмбрионами, погибшими икринками, которые к этому времени обычно покрываются сапролегнией. Во втором случае для нереста рыбца был использован искусственный субстрат в виде мелкоячеистой дели, уложенной в несколько слоев на дно нерестового бассейна. На искусственный субстрат икра легла неравномерно, образуя многослойные комочки. Часть икры оставили в бассейне с проточной водой и аэрацией, предварительно отсадив из него производителей, а часть перенесли в аквариум с аэрацией. Через сутки в бассейне мы наблюдали массовую гибель икры, а через двое суток вся икра погибла. В аквариумах, на субстрате, где икра залегала более тонким слоем, выживаемость составила около 20 %. Далее все эмбрионы из обеих опытных групп с большой осторожностью были перенесены в лоток для подращивания. Вылупившиеся эмбрионы рыбца (предличинки), соответствовали восьмому этапу эмбрионального развития рыбца, они были малоподвижными и скопились достаточно толстым слоем в затененном углу ванны [5]. Окончательный переход личинки рыбца к мальковому периоду произошел после 55 суток. Длина личинок составила 9,8–12,5 мм. Жаберные крышки полностью окостенели, а во всех плавниках наблюдались хорошо развитые костные лучи. Эмбриональное и личиночное развитие рыбца, а также рацион и режим питания в эксперименте представлены в табл. 2. Таблица 2 Table 2 Эмбриональное и личиночное развитие рыбца Vimba embryonic and larval development Дата взятия образцов Вид работ Размеры эмбрионов и личинок, мм Рацион, % Режим кормления, раз 8.12.2019 Гипофизарная инъекция – – – 9.12.2019 Оплодотворение – – – 10.12.2019 Закладка икры в аппарат Вейса, инкубация – – – 12.12.2019 Появление первых эмбрионов, перенос личинок в личиночную ванну – – – 13.12.2019 Окончательный выход эмбрионов из оболочки 5–6 – – 19.12.2019 Заполнение плавательного пузыря, переход к активному плаванию 6,2–7,5 – – 24.12.2019 Переход эмбриона на смешанный вид питания. Начало личиночной стадии 7,1–8,2 Инфузории – 80 Коловратки – 20 10 29.12.2019 Полное рассасывание желточного мешка. Переход на внешнее питание 7,7–8,8 Инфузории – 60 Коловратки – 30 Науплии артемии – 10 10 9.01.2020 Окостенение жаберной крышки, формирование лепидотрихий непарных плавников 8,5–9,3 Науплии артемии – 50 Дафнии – 50 6 15.01.2020 Формирование лепидотрихий парных плавников 9–9,8 Науплии артемии – 50 Дафнии – 50 6 22.01.2020 Полное формирование парных плавников, развитие костных лучей непарных плавников 9,4–1,1 Дафния – 50 Босмина – 30 Артемия – 40 6 6.02.2020 Окончательный переход личинки к мальковому периоду 9,8–12,5 Науплии артемии – 50 Дафнии – 50 6 По завершении личиночного периода мальки рыбца были переведены в выростной мальковый бассейн. Заключение В результате проведенной нерестовой кампании адаптированных к содержанию в УЗВ производителей рыбца, проведенной двумя методами – на субстрате и in vitro (в аппарате Вейса), выявлена эффективность использованных методов. Установлено, что лучшие показатели инкубирования икры были получены в аппарате Вейса. На субстрате гибель икры составила около 80 %. Причиной гибели стало неравномерное распределение икры на субстрате. Подращивание эмбрионов и личинок рыбца в специальном оборудовании – ваннах с проточной водой – позволило получить жизнеспособную молодь. Показано, что в специальных ваннах с проточной водой после перехода эмбриона в личиночную стадию можно провести перевод личинок на активное внешнее питание. Общее развитие эмбрионов и личинок до мальковой стадии составило 55 суток.
Список литературы

1. Уловы рыб и нерыбных объектов рыбохозяйственными организациями Азовского бассейна и прилежащих участков Черного моря (1960–1990 гг.): стат. сб. / сост. Ю. И. Зайдинер, Л. В. Попова. СПб.: Изд-во ГосНИОРХ, 1993. 170 с.

2. Матишов Г. Г., Балыкин П. А., Пономарева Е. Н. Рыболовство и аквакультура России // Вестн. Рос. акад. наук. 2012. № 1. С. 35–43.

3. Карпенко Г. И., Переверзева Е. В., Головко Г. В., Зипельт Л. И. Ретроспективный анализ исследовательских работ по воспроизводству рыбца и шемаи (1930–2015 гг.). Ростов н/Д.: Изд-во АзНИИРХ, 2017. 286 c.

4. Смирнова Е. Н. Особенности развития кубанского рыбца в эмбриональном и личиночном периодах жизни // Тр. ин-та морфологии животных им. А. Н. Северцова. М., 1957. Вып. 20. С. 71–95.

5. Неваленный А. Н., Пономарева Е. Н., Сорокина М. Н. Биологические основы рыбоводства: учеб. М.: Моркнига, 2016. 434 с.