Kalinigrad, Russian Federation
Russian Federation
Russian Federation
Russian Federation
Russian Federation
Russian Federation
from 01.01.2012 until now
Russian Federation
Russian Federation
Russian Federation
Russian Federation
Russian Federation
The problem of animal protein deficiency is relevant in aquaculture feed production. The larvae of the black soldier fly Hermetia illucens are increasingly used, but due to the presence of chitin, they are not fully absorbed. The aim of the study was to assess the rationality of using larval hydrolysate in biological tests for growing rainbow trout fry. In an experiment based on high-temperature hydrolysis of the larvae, a water-soluble additive was obtained in dry form, introduced into compound feed instead of part of the fish meal, and fish indicators were analyzed. The chemical composition of the larva and its hydrolysate was studied. The protein content in the larva and supplement was 17.8% and 43.4%, the chitin in the larva was 7.5%, and it was absent in the hydrolysate. Analysis of the amino acid composition of the proteins of the larva, its water-soluble supplement and fish meal showed that they are close. Biological tests were carried out at the fish-breeding enterprise PROMKORM LTD, for 30 days in RAS installations on 2 batches of trout (experimental and control). In the control experiments, industrial feed recipes for trout were used. In the experiment, 10% of fish meal in the basic feed recipe was replaced by 10% of the larva hydrolysate. The weight, hematological and morphophysiological parameters of fish were studied. At the end of the experiment, the chemical composition of the young fish of both groups was almost identical. No reliable differences were noted when comparing the parameters of length, weight, Fulton fatness coefficient, obesity degree, liver, heart and spleen indices. Blood parameters (the concentration of erythrocytes, lymphocytes, hemoglobin in the blood and in the erythrocyte, protein in the blood serum) were somewhat better in the experimental fish, but the differences were not statistically reliable. Water-soluble hydrolysate of the larva of Hermetia illucens can be considered a promising additive for aquaculture.
black soldier fly larva Hermetia illucens, high-temperature hydrolysis, aquaculture, rainbow trout, compound feed, biological testing
Введение
Российское кормопроизводство в индустриальной аквакультуре остро нуждается в качественных белковых добавках, необходимых для создания полноценных комбикормов, которые предназначены для хищных пород рыб (лососевых, форелевых, сиговых, осетровых) [1]. Основным источником протеина в кормах для рыб традиционно является кормовая рыбная мука, которая в настоящее время в России не производится в достаточном количестве.
Перспективным источником животного протеина считается личинка мухи черной львинки Hermetia illucens, которая отличается быстрым ростом и используется в составе различных комбикормов [2]. Проблемой применения данного сырья является наличие в экоскелете личинки хитина, плохо перевариваемого пищеварительными органами животных, птиц и рыб [3]. Специалисты ФГБУН «Федеральный исследовательский центр питания, биотехнологии и безопасности пищи» для повышения усвояемости белка Hermetia illucens рекомендуют проводить предварительную модификацию личинки тем или иным способом [4].
Рациональным способом повышения усвояемости личинки представляется ее глубокий гидролиз высокотемпературным методом по технологии Калининградского государственного технического университета (КГТУ), позволяющий уменьшать содержание хитина в водорастворимом гидролизате и переводить белки в усвояемое низкомолекулярное состояние [5]. Эксперименты по термогидролизу хитинсодержащих отходов от разделки крабов и креветок показали практическое отсутствие хитина в водорастворимой фракции гидролизатов при существенном повышении содержания белка в их сушеных формах (44 и 48 %). Полученные таким способом крабовые и креветочные протеиновые добавки были успешно использованы в составе комбикормов для молоди радужной форели, выращиваемой в индустриальной аквакультуре [6].
В России во многих регионах выращивают личинки Hermetia illucens для кормовых нужд. Анализ опубликованных материалов показывает, что данное сырье, в зависимости от питания, содержит (% на сухую массу) около 40 % протеина, более 20 % жира, 10–12 % усвояемых углеводов, 3–7 % хитина и 1–4 % минеральных веществ [7].
Имеющиеся сведения по применению различных форм личинки в питании рыб показывают, что разнообразные корма из личинки полностью рыбами не усваиваются, а причиной этого авторы считают наличие в них хитина, устойчивого к пищеварительным ферментам рыб [8].
Целью исследования являлась оценка рациональности использования водорастворимого гидролизата личинки мухи черной львинки Нermetia illucens в биологических испытаниях по выращиванию в аквакультуре молоди радужной форели путем введения его в состав комбикормов взамен части рыбной муки при анализе морфометрических и гематологических показателей.
Материалы и методы
Экспериментальные исследования проводили на кафедре пищевой биотехнологии КГТУ и в ООО «ПРОМКОРМ». Личинку получали в агрофирме ИП Лихварь Петр Вячеславович (Калининградская область).
Модификацию личинки проводили термогидролизом в водной среде по технологии КГТУ в термореакторе при 130 °С в течение 60 мин под давлением 0,20 МПа [9]. Из гидролизованной суспензии после разделения получали 2 фракции – водорастворимую (пептидно-протеиновую) и водонерастворимую (белково-минеральную), которые высушивали и измельчали. Анализ химического состава сырья и гидролизованных добавок проводили по стандартным и общепринятым методикам. Содержание влаги устанавливали по ГОСТ Р 54951-2012, сырого протеина – по ГОСТ 13496.4-2019, жира – по ГОСТ 13496.15-2016, хитина – по ГОСТ 7635-1986. Содержание аминокислот в белках личинки и протеиновой добавки оценивали по ФР.1.31.2015.19761 в научно-исследовательской лаборатории UBF. Содержание минеральных веществ определяли методом DIN EN ISO 11885-2009-09 с предварительной минерализацией сырья и идентификацией минералов методом молекулярной абсорбционной спектроскопии. Статистическую обработку результатов проводили общепринятыми методами математической статистики на 95 %-м доверительном уровне.
В эксперименте 10 % водорастворимой добавки из личинки с молекулярной массой ММ 5–10 кДа вводили вместо соответствующей части рыбной муки в состав кормов молоди радужной форели (Oncorhynchus mykiss). Корма были произведены методом экструзии. Все компоненты взвешивали согласно рецептуре, перемешивали, подавали в цилиндр экструдера, где материал при транспортировке термообрабатывался, гомогенизировался, формовался в форме цилиндров.
Рецептуры контрольного и экспериментального кормов, предназначенных для мальков радужной форели, представлены в табл. 1, их питательная ценность показана в табл. 2.
Таблица 1
Table 1
Состав контрольного и экспериментального комбикормов, %
Composition of control and experimental compound feeds, %
|
Компонент корма |
Контроль |
Эксперимент |
|
Рыбная мука |
40,8 |
30,8 |
|
Соевый концентрат |
14,0 |
|
|
Пшеничная мука |
10,0 |
10,0 |
|
Кукурузный глютен |
||
|
Добавка из личинки |
– |
|
|
Мука кровяная |
8,0 |
|
|
Рыбий жир |
10,0 |
|
|
Креветка сушеная |
4,0 |
|
|
Заменитель цельного молока |
2,0 |
|
|
Лизин |
0,01 |
|
|
Метионин |
||
|
Витамин С |
0,05 |
|
|
Эмульгатор жиров |
0,01 |
|
Окончание табл. 1
Ending of table 1
|
Компонент корма |
Контроль |
Эксперимент |
|
Танин акватан |
0,01 |
|
|
Сорбент |
||
|
Субтилис |
||
|
Антиоксидант |
||
|
КОК «Фермин» |
0,03 |
|
|
Пробиотик «Арлен» |
0,05 |
|
|
Бентонин |
0,50 |
|
|
Витаминно-минеральный премикс для форели |
||
Таблица 2
Table 2
Расчетные показатели питательной ценности кормов, использованных
в биологических испытаниях с радужной форелью
Estimated nutritional values of feeds used in biological trials with rainbow trout
|
Показатель |
Контроль |
Эксперимент |
|
Обменная энергия, ккал/100 г |
285 |
277 |
|
Влажность, % |
8,13 |
7,12 |
|
Сырой протеин, % |
54,74 |
53,76 |
|
Сырой жир, % |
6,62 |
|
|
Линолевая кислота, % |
0,63 |
0,71 |
|
Сырая клетчатка, % |
1,98 |
1,87 |
|
Сырая зола, % |
10,21 |
9,12 |
|
ЛПУ (крахмал + сахар), % |
10,17 |
11,12 |
|
Лизин, % |
3,40 |
3,54 |
|
Метионин, % |
1,16 |
1,09 |
|
Метионин + цистин, % |
1,74 |
1,66 |
|
Треонин, % |
2,04 |
2,12 |
|
Триптофан, % |
0,57 |
0,47 |
|
Аргинин, % |
3,06 |
3,17 |
|
Изолейцин, % |
1,95 |
1,99 |
|
Лейцин, % |
4,61 |
4,75 |
|
Валин, % |
2,72 |
2,83 |
|
Гистидин, % |
1,56 |
1,77 |
|
Фенилаланин, % |
2,49 |
2,51 |
|
Ca, % |
2,39 |
|
|
P, % |
1,75 |
|
|
Na, % |
0,64 |
|
|
Cl, % |
0,45 |
|
|
Витамин А, тыс. МЕ |
15,0 |
|
|
Витамин D3, тыс. МЕ |
3,0 |
|
|
Витамин Е, мг/кг |
20,0 |
|
|
Витамин К3, мг/кг |
1,25 |
|
|
Витамин В1, мг/кг |
15,0 |
|
|
Витамин В2, мг/кг |
30,0 |
|
|
Витамин В3, мг/кг |
87,5 |
|
|
Витамин В4, мг/кг |
250,0 |
|
|
Витамин В5, мг/кг |
25,0 |
|
|
Витамин В6, мг/кг |
7,5 |
|
|
Витамин В12, мг/кг |
0,05 |
|
|
Витамин Вс, мг/кг |
2,5 |
|
|
Витамин С, мг/кг |
995,0 |
|
|
Fе, мг/кг |
5,0 |
|
|
Cu, мг/кг |
1,25 |
|
|
Zn, мг/кг |
9,0 |
|
|
Mn, мг/кг |
12,5 |
|
|
Co, мг/кг |
0,25 |
|
|
I, мг/кг |
0,50 |
|
|
Se, мг/кг |
0,05 |
|
В течение 30 дней (с 5 июня по 4 июля 2024 г.) проводили сравнительные испытания в 2-х партиях форели (экспериментальная и контрольная) из 50 экземпляров каждая, массой на начало эксперимента 4–5 г. Для этого задействовали 2 рыбоводные установки, работающие по принципу замкнутого водоснабжения (УЗВ-установки). Кормление рыб осуществлялось 3 раза в сутки при взвешивании через каждые 10 дней.
Параметры воды в системе измерялись ежедневно. Уровень растворенного кислорода составил 7,5 ± 1,0 мг/л (Handy Polaris, OxyGuard International A/S, Биркерод, Дания), а средняя температура воды поддерживалась на уровне 18,9 ± 1,4 °C за счет работы чиллера (Hailea HC-2 200BH, Guangdong Hailea Group Co., Ltd, China). Концентрацию соединений азота определяли с помощью eXact® Eco-Check Photometer-Kit (Industrial Test Systems, Inc., Рок-Хилл, США), показатель содержания нитрита (в виде NO2) составил 0,08 ± 0,03 мг/л, нитрата (NO3) – 6,6 ± 1,8 мг/л. Циркуляция воды в системе осуществлялась за счет циркуляционного насоса производительностью 9,6 м3/ч (Pedrollo JSWm 3CL, Pedrollo S.p.A, Italy). Аэрация воды в бассейнах обеспечивалась за счет работы вихревого компрессора.
В период выращивания молоди радужной форели изучали весовые, гематологические и морфофизиологические показатели рыб, т. к. они позволяют определить физиологический статус выращенной молоди [10].
При оценке морфометрических особенностей выполняли следующие промеры: длина зоологическая, длина промысловая, длина по Смитту, длина головы, диаметр глаза, максимальная и минимальная высота тела, по стандартной методике.
Для оценки скорости роста молоди применяли общепродукционный коэффициент массонакопления [11]:
где Мнач и Мкон – начальная и конечная масса рыб, г; Тнач и Ткон – возраст рыб в начале и конце периода, сут.
Кроме того, рассчитывали относительный среднесуточный прирост по формуле [2, 9]
Для оценки упитанности рассчитывали коэффициент упитанности по Фультону. По результатам вскрытия оценивали уровень ожирения по 5-балльной шкале М. Л. Прозоровской [12, 13].
Для оценки физиологических показателей использовали метод морфофизиологических индикаторов, рассчитывались индексы печени, селезенки, сердца [14].
Гематологические исследования проводили по единым отработанным методикам. Отлов рыбы производили непосредственно перед проведением исследования – использовались активные и клинически здоровые особи, без видимых повреждений. Забор крови осуществляли из гемального канала хвостового стебля прижизненно.
Из концентрационных показателей крови определяли концентрацию гемоглобина, эритроцитов, лимфоцитов, общего белка в сыворотке крови, содержание гемоглобина в эритроците. Концентрацию гемоглобина определяли гемиглобинцианидным методом на гемо-глобинометре МИНИ-Гем 540, концентрацию эритроцитов – пробирочным методом, концентрацию общего белка в сыворотке крови – рефрактометрически, по коэффициенту преломления сыворотки, который измеряли на рефрактометре ИРФ-454 Б2М [15, 16].
Результаты и их обсуждение
Результаты исследования показали, что личинка Hermetia illucens, выращенная в условиях агрофирмы Лихварь П. В., является перспективным источником кормовых веществ и содержит (% массы на сухое вещество) белка 40,1 %, жира 21,6 %, минеральных веществ 13,1 %, углеводов 17,0 %, в том числе усвояемых 9,5 %, при этом количественный уровень неусвояемого хитина составляет 7,5 %. Полученная высокотемпературным гидролизом и высушенная сублимационно водорастворимая добавка содержала (% сырой массы) протеина 43,4 %, воды 12,3 %, жира 4,5 %, усвояемых углеводов 24,0 % и минеральных веществ 15,8 %. При этом хитин практически отсутствовал, был обнаружен только в следах.
Сравнительный анализ аминокислотного состава протеинов личинки Hermetia illucens, ее водорастворимой добавки и рыбной муки показал, что они близки. Все образцы содержали практически все незаменимые для рыб аминокислоты. Максимальное количество приходилось на аланин (8,5 %), глутаминовую кислоту (5,4 %), пролин (3,6 %), гистидин (3,5 %), лизин (2,3 %), а суммарное содержание незаменимых аминокислот в добавке было несколько выше относительно их количества в личинке (18,2 и 17,7 % соответственно). Установленная аналогия в аминокислотном профиле потенциально свидетельствует о питательной сбалансированности белков гидролизата личинки [17].
Установлено, что при гидролизе личинки основная масса минеральных веществ переходит в осадочную (водонерастворимую) фракцию, в сухой форме их содержание в водорастворимой добавке составило 15,8 %, а в водонерастворимой – 24,1 %. Результаты анализа показали, что минеральная фракция содержит калий, фосфор, кальций, магний и другие ценные минеральные вещества, необходимые для роста форели [17].
По окончании эксперимента был установлен химический состав молоди обеих групп. Он оказался практически идентичным (табл. 3), что свидетельствует об отсутствии отрицательного влияния компонентов добавки из гидролизованной личинки на формирование белковой массы, жировых накоплений и минерального скелета на данной стадии роста форели.
Таблица 3
Table 3
Общий химический состав молоди радужной форели,
выращенной с применением контрольных и экспериментальных комбикормов,
обогащенных гидролизатом личинки Нermetia illucens
General chemical composition of juvenile rainbow trout grown using control
and experimental feeds enriched with Нermetia illucens larval hydrolysate
|
Образец рыбы |
Вода |
Белок |
Жир |
Минеральные вещества |
|
Эксперимент |
77,21 ± 0,14 |
15,84 ± 0,09 |
4,76 ± 0,03 |
3,12 ± 0,05 |
|
Контроль |
76,72 ± 0,12 |
15,43 ± 0,11 |
5,17 ± 0,04 |
2,70 ± 0,06 |
В табл. 4 приведены усредненные данные по некоторым морфометрическим и морфофизиологическим показателям молоди форели, задействованной в эксперименте.
Таблица 4
Table 4
Морфометрические и морфофизиологические показатели молоди радужной форели
Morphometric and morphophysiological parameters of juvenile rainbow trout
|
Показатель |
Начало эксперимента* |
Завершение эксперимента (30 сут) |
||||
|
М |
m |
Контроль |
Опыт |
|||
|
М |
m |
М |
m |
|||
|
Длина зоологическая, см |
7,36 |
0,15 |
12,24 |
0,47 |
12,76 |
0,54 |
|
Длина промысловая, см |
6,40 |
0,12 |
10,98 |
0,42 |
11,42 |
0,52 |
|
Длина по Смитту, см |
7,08 |
0,14 |
11,80 |
0,45 |
12,12 |
0,47 |
|
Длина головы, см |
1,48 |
0,07 |
2,74 |
0,09 |
2,86 |
0,11 |
|
Диаметр глаза, см |
0,54 |
0,04 |
0,72 |
0,01 |
0,78 |
0,04 |
|
Максимальная высота тела, см |
1,72 |
0,03 |
3,30 |
0,12 |
3,56 |
0,14 |
|
Минимальная высота тела, см |
0,58 |
0,01 |
1,26 |
0,06 |
1,24 |
0,04 |
|
Масса, г |
4,32 |
0,22 |
26,29 |
3,06 |
29,78 |
3,66 |
|
Коэффициент упитанности по Фультону |
1,65 |
0,06 |
1,91 |
0,03 |
1,94 |
0,04 |
|
Ожирение в баллах |
3,00 |
0,33 |
3,00 |
0,24 |
2,60 |
0,30 |
|
Индексы внутренних органов |
||||||
|
Печень |
1,57 |
0,34 |
2,07 |
0,31 |
2,29 |
0,19 |
|
Сердце |
0,16 |
0,16 |
0,19 |
0,03 |
0,14 |
0,02 |
|
Селезенка |
0,14 |
0,06 |
0,14 |
0,05 |
0,11 |
0,02 |
* М – средневзвешенное значение; m – доверительный интервал.
При исходной средней массе 4,32 ± 0,22 г и зоологической длине 7,36 ± 0,15 см за 30 сут выращивания молодь форели контрольной группы достигла средней массы 26,29 ± 3,06 г и длины 12,24 ± 0,47 см (см. табл. 4). За этот же период времени молодь форели из опытной группы достигла средней массы 29,78 ± 3,66 г и длины 12,76 ± 0,54 см. При сравнении данных статистически достоверных различий не отмечается. Также не отмечено статистически достоверных различий и по остальным промерам.
Общепродукционный коэффициент массонакопления за период исследований у молоди форели контрольной группы составил 0,18, у опытной – 0,21. Относительный среднесуточный прирост в контрольной группе составил 3,50 %, в опытной – 3,64 %.
Таким образом, экспериментальные корма в период исследования обеспечивали темп линейного и весового роста молоди форели, несколько более высокий и сопоставимый с таковым у контрольной группы, питающейся стандартным рационом.
Коэффициент упитанности у форели контрольной группы составил 1,91 ± 0,03, у форели опытной группы – 1,94 ± 0,04, что можно считать достаточно высоким значением (удовлетворительные значения коэффициента для радужной форели должны быть не меньше 1) [18–20]. Достоверных различий по данному показателю, а также по уровню жирности по 5-балльной шкале между контрольной и опытной группой нет, что свидетельствует о схожем характере жиронакопления при кормлении кормами контрольной и опытной рецептур.
При вскрытии и визуальном осмотре молоди патологические изменения внутренних органов на начальном этапе исследований встречались единично и выражались в изменениях печени, некотором увеличении размеров желчного пузыря с изменением цвета желчи. На заключительном этапе исследований патологические изменения печени встречались у 2 особей в контрольной группе. В опытной группе особей с патологическими изменениями внутренних органов отмечено не было.
По результатам вскрытия оценивали морфофизиологические показатели молоди форели в период исследований (см. табл. 4).
По данным различных авторов, гепатосоматический индекс молоди форели (с учетом массы) может находиться в диапазоне 1,2–2,24 (чаще 1,2–1,5) [20, 21]. По некоторым данным, гепатосоматический индекс печени форели в возрасте до 2 лет в среднем не должен превышать 1,5 % массы рыбы; нормальная масса печени радужной форели – 1–1,4 % массы тела [21]. Однако ряд авторов приводят и более высокие значения гепатосоматического индекса для молоди форели (от 2,24 [22] до 2,5 (выше – ожирение органа) [19]). Основываясь на приведенных данных, полученные нами значения индекса печени (2,29 ± 0,19 в опытной, 2,07 ± 0,31 в контрольной группе) не имеют достоверных различий; в рамках имеющегося диапазона данных их можно признать относительно высокими. Однако, учитывая отсутствие рыб с патологическими изменениями органа при визуальной оценке в опытной группе, а также отсутствие достоверных различий между молодью контрольной и опытной групп, можно утверждать, что данные значения не связаны с включением в корма экспериментальной добавки из гидролизата личинки.
Индекс сердца молоди опытной группы составил 0,19 ± 0,03, контрольной группы – 0,14 ± 0,02. Достоверных различий не выявлено. В целом данные по индексу сердца близки к значениям, известным из литературных источников для форели схожей массы (0,10–0,24) [10, 14, 20].
Индекс селезенки у молоди форели опытной группы составил 0,11 ± 0,02, контрольной группы – 0,14 ± 0,05. Достоверных различий не отмечено. Полученные значения в целом близки к нижней границе диапазона значений для форели схожей массы и возраста из литературных источников (0,09–0,28) [14, 20]. В целом ввиду сложности и разнообразия физиологических функций селезенки ее средняя масса достаточно лабильна [20]; в эксперименте относительно невысокие ее значения могут быть связаны с особенностями кислородного режима и гидрохимических условий в установке.
Гематологические показатели экспериментальных и контрольных образцов молоди форели крови приведены в табл. 5.
Таблица 5
Table 5
Концентрационные показатели крови молоди радужной форели
Blood concentration indices of juvenile rainbow trout
|
Показатель |
Начало |
Завершение эксперимента (30 сут) |
|
|
Контроль |
Опыт |
||
|
Концентрация эритроцитов, млн/мкл |
1,08 ± 0,4 |
1,10 ± 0,5 |
1,08 ± 0,4 |
|
Концентрация лимфоцитов, % |
65 ± 1,1 |
79 ± 1,3 |
94 ± 1,6 |
|
Концентрация гемоглобина, г% |
10 ± 0,1 |
11 ± 0,1 |
10 ± 0,1 |
|
Содержание гемоглобина в эритроците, пг |
62,0 ± 1,0 |
62,5 ± 1,2 |
62,5 ± 1,4 |
|
Общий белок в сыворотке крови, г% |
5,8 ± 0,1 |
5,8 ± 0,1 |
5,6 ± 0,1 |
Из данных табл. 5 можно сделать заключение, что форменные элементы крови в обеих группах молоди форели находятся в норме, без патологических изменений. Клетки крови моноциты (не зернистые лейкоциты, участвующие в иммуногенезе) в контрольной группе составили 11 %, тогда как в опытной группе 14 %. Считается, что в норме у взрослой форели этот показатель должен быть на уровне 16 % [16]. С учетом того, что исследования проводилось на молоди, полученные данные свидетельствуют о несколько лучшем формировании иммунного статуса у рыб экспериментальной группы на данном этапе исследований. Несколько повышенное содержание белка в крови форели контрольной группы (5,8 г% в начале и в конце эксперимента) показывает некоторое сгущение крови у данных рыб и более высокую потенциальную склонность к гемолизу, хотя различия недостоверны. Идентичное содержание гемоглобина в крови обеих партий рыб свидетельствует о практически одинаковом уровне обмена кислорода.
Заключение
Результаты биологических исследований по применению продуктов гидролиза личинки Hermetia illucens в составе комбикорма для молоди радужной форели, выращиваемой в индустриальной аквакультуре, показали целесообразность использования личинки в виде ее водорастворимого сушеного гидролизата, полученного высокотемпературным гидролизом. Данная обработка позволила удалить хитин из состава и перевести белки в низкомолекулярное физиологически усвояемое состояние. Аминокислотный состав личинки и ее водорастворимого гидролизата показал близость их по данному показателю протеинам рыбной кормовой муки. В составе гидролизата обнаружены ценные минеральные вещества – калий, фосфор, кальций, магний и другие, полезные растущему организму.
Введение в составе комбикормов для молоди форели взамен 10 % рыбной муки гидролизата личинки в течение 30 сут испытаний не привело к изменению химического состава рыб, достоверным различиям в значениях морфометрических и морфофизиологических характеристик. По основным гематологическим показателям крови также не было обнаружено достоверных различий между контрольной и экспериментальной группой рыб. Все показатели находились на уровне, характерном для здоровых рыб.
Установленная идентичность в показателях экспериментальных и контрольных групп рыб свидетельствует о перспективности протеинового потенциала личинки Hermetia illucens в форме ее водорастворимого бесхитинового гидролизата в кормопроизводстве для развития аквакультуры.
1. Lagutkina L. Yu. Perspektivnoe razvitie mirovogo proizvodstva kormov dlya akvakul'tury: al'ternativnye istochniki syr'ya [Promising development of global aquaculture feed production: alternative sources of raw materials]. Vestnik Astrahanskogo gosudarstvennogo tekhnicheskogo universiteta. Seriya: Rybnoe hozyajstvo, 2017, no. 1, pp. 67-78.
2. Ushakova N. A., Ponomarev S. V., Fedorovyh Yu. V., Bastrakov A. I., Pavlov D. S. Fiziologicheskie osnovy pitatel'noj cennosti koncentrata lichinok Hermetia illucens v racione ryb [Physiological basis of nutritional value of Hermetia illucens larval concentrate in fish diet]. Izvestiya RAN. Seriya biologicheskaya, 2020, no. 3, pp. 293-300.
3. Matrosova S. V., Lyabzina S. N., Gorbach V. V., Il'mast Yu. N. Ocenka effektivnosti kormleniya raduzhnoj foreli (Oncorhynchus mykiss) dietoj na osnove lichinki chernoj l'vinki [Evaluation of the effectiveness of feeding rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) with a diet based on black lion larva]. Izvestiya KGTU, 2023, no. 71, pp. 11-23.
4. Tyshko N. V., Zhminchenko V. M., Nikitin N. S., Trebuh M. D., Shestakova S. I., Pashorina V. A., Sadykova E. O. Kompleksnye issledovaniya biologicheskoj cennosti belka lichinki Hermetia illucens [Comprehensive studies of the biological value of the Hermetia illucens larva protein]. Voprosy pitaniya, 2021, vol. 90, no. 5, pp. 49-58. DOI: org/10.33029/0042-8833-2021-90-5-49-58.
5. Mezenova O. Ya. Maksimova S. N., Agafonova S. V., Romanenko N. Yu., Kalinina N. S., Volkov V. V., Merzel' J. T. Ocenka biopotenciala vtorichnogo krabovogo syr'ya i produktov ego gidroliza dlya ispol'zovaniya v akvabiotekhnologii [Assessment of the biopotential of recycled crab raw materials and products of its hydrolysis for use in aquatic biotechnology]. Vestnik Mezhdunarodnoj akademii holoda, 2023, no. 3, pp. 44-53. DOI:https://doi.org/10.17586/1606-4313-2023-22-3-44-52.
6. Shakhova E., Mezenova O., Romanenko N., Agafonova S., Volkov V., Kalinina N., Pyanov D. Effect of inclusion of fish protein hydrolysate in diet for european whitefish (Coregonus lavaretus Linnaeus, 1758) juveniles on their hematological parameters. BIO Web of Conferences 64, 01010. 2023. Vol. 64. DOI: https://doi.org/10.1051/bioconf/20236401010.
7. Sadykova E. O., Shumakova A. A., Shestakova S. I., Tyshko N. V. Pishchevaya i biologicheskaya cennost' biomassy lichinok Hermetia illucens [Nutritional and biological value of biomass of Hermetia illucens larvae]. Voprosy pitaniya, 2021, vol. 90, no. 2, pp. 73-82.
8. Fairuz Liyana Mohd Rasdi, Ahmad Razali Ishak, Pui Wee Hua, Siti Norashikin Mohd Shaifuddin, Nazri Che Dom, Farah Ayuni Shafie, Abdul Mujid Abdullah, Zulhis-yam Abdul Kari, Hisham Atan Edinur. Evaluating the growth and development of black soldier fly (BSF) (Hermetia illucens (L.)) (Diptera: Stratiomyidae) larvae reared on different agricultural waste materials. Serranga, 2023, vol. 289 (1), pp. 55-68.
9. Mezenova O. Ya. Biotekhnologicheskie sposoby polucheniya proteinovyh i belkovo-mineral'nyh dobavok iz vto-richnogo rybnogo syr'ya koptil'nyh proizvodstv [Biotechnological methods for obtaining protein and protein-mineral additives from recycled fish raw materials of smokehouse industries]. Izvestiya vuzov. Pishchevaya tekhnologiya, 2019, no. 2-3, pp. 68-71.
10. Knyazeva L. M., Shumilina A. K., Kostyunichev V. V., Ostroumova I. N. Biologicheskie osobennosti molodi sigovyh i foreli v usloviyah industrial'nogo vyrashchivaniya [Biological features of juvenile whitefish and trout in industrial cultivation]. Saint Petersburg, Izd-vo GosNIORH, 2007. 56 p.
11. Kupinskij S. B. Produkcionnye vozmozhnosti ob"ektov akvakul'tury [Productive capabilities of aquaculture facilities]. Moscow, Ekon-Inform Publ., 2010. 139 p.
12. Nikol'skij G. V. Ekologiya ryb [Ecology of fish]. Moscow, Vysshaya shkola Publ., 1974. 368 p.
13. Pravdin I. F. Rukovodstvo po izucheniyu ryb (pre-imushchestvenno presnovodnyh) [Guidelines for the study of fish (mainly freshwater)]. Moscow, Pishchevaya promyshlennost' Publ., 1966. 376 p.
14. Shvarc S. S., Smirnov V. S., Dobrinskij L. N. Metod morfofiziologicheskih indikatorov v ekologii nazemnyh pozvonochnyh [The method of morphophysiological indicators in the ecology of terrestrial vertebrates]. Sverdlovsk, Ural. fil. Akad. nauk SSSR, 1968. Vol. 3. Iss. 58. 137 p.
15. Metodicheskie ukazaniya po provedeniyu gematologicheskogo obsledovaniya ryb (utv. Minsel'hozprodom 02 fevralya 1999 g. № 13-4-2-/1487) [Guidelines for hematological examination of fish (approved by the Ministry of Agriculture and Food on February 02, 1999, No. 13-4-2-/1487)]. Available at: https://e-ecolog.ru/docs/pQbF13m1UU6Pwog1f85Wo?utm_referrer=https%3A%2F%2Fwww.yandex.ru%2 (accessed: 26.05.2024).
16. Ivanova N. T. Atlas kletok krovi ryb [Atlas of fish blood cells]. Moscow, Legkaya i pishchevaya promyshlen-nost' Publ., 1983. 86 p.
17. Shcherbina M. A., Gamygin E. A. Kormlenie ryb v presnovodnoj akvakul'ture [Fish feeding in freshwater aquaculture]. Moscow, Izd-vo VNIRO, 2006. 360 p.
18. Voroshilina Z. P., Sakovskaya V. G., Hrustalev E. I. Tovarnoe rybovodstvo [Commercial fish farming]. Moscow, Kolos Publ., 2009. 266 p.
19. Gabolaeva A. R. Morfofiziologicheskie izmeneniya organov raduzhnoj foreli [Morphophysiological changes in the organs of rainbow trout]. Aktual'nye voprosy sovershenstvovaniya tekhnologii proizvodstva i pererabotki produkcii sel'skogo hozyajstva: materialy Mezhdunarodnoj nauchno-prakticheskoj konferencii (Joshkar-Ola, 16–17 marta 2022 g.). Joshkar-Ola, Izd-vo Marijs. gos. un-ta, 2022. Vol. XXIV. Pp. 484-487.
20. Kuricyn A. E., Efremov S. A., Makarova T. A. Morfofiziologicheskie harakteristiki raduzhnoj foreli (Oncorhynchus mykiss Walbaum) i muksuna (Coregonus muksun (Pallas)) pri sadkovom vyrashchivanii [Morphophysiological characteristics of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss Walbaum) and muksun (Coregonus muksun (Pallas)) during cage cultivation]. Izvestiya TSKHA. Moscow, 2017. Iss. 3. Pp. 84-94.
21. Molchanova K. A. Rybovodno-biologicheskie oso-bennosti formirovaniya matochnogo stada raduzhnoj foreli v ustanovkah zamknutogo vodosnabzheniya. Dissertaciya … kand. biol. nauk [Fish-breeding and biological features of the formation of brood stock of rainbow trout in closed-circuit water supply installations. Dissertation ... cand. biol. sciences]. Kaliningrad, Izd-vo KGTU, 2018. 180 p.
22. Koshak Zh., Koshak A., Dolgaya D., Kohovich A., Rukshan L. Kombikorma dlya raduzhnoj foreli s razlichnymi vidami proteina [Compound feed for rainbow trout with various types of protein]. Kombikorma, 2019, no. 7-8, pp. 32-36. DOI:https://doi.org/10.25741/2413-287X-2019-07-3-077.
