Журналы
НЕФТЕГАЗОВЫЕ ТЕХНОЛОГИИ И ЭКОЛОГИЧЕСКАЯ БЕЗОПАСНОСТЬ Серия: Морская техника и технология Серия: РЫБНОЕ ХОЗЯЙСТВО Серия: УПРАВЛЕНИЕ, ВЫЧИСЛИТЕЛЬНАЯ ТЕХНИКА И ИНФОРМАТИКА Серия: ЭКОНОМИКА

Вестник АГТУ (АРХИВНЫЙ)
История Ссылки Новости Контакты
Отправить рукопись
Главная / Журналы / Вестник Астраханского государственного технического университета. Серия: Рыбное хозяйство / Номер 4 / ВЛИЯНИЕ ИНЪЕКЦИЙ СУРФАГОНА НА БИОХИМИЧЕСКИЙ СОСТАВ КРОВИ И СТРУКТУРНЫЕ ПРЕОБРАЗОВАНИЯ ЯИЧНИКОВ САМОК ГИБРИДА РУССКИЙ ОСЕТР × ЛЕНСКИЙ ОСЕТР (ACIPENSER GUELDENSTAEDTII BRANDT, 1833 × ACIPENSER BAERII BRANDT, 1869) В УСЛОВИЯХ ЗАМКНУТОГО ЦИКЛА ВЫРАЩИВАНИЯ
ВЛИЯНИЕ ИНЪЕКЦИЙ СУРФАГОНА НА БИОХИМИЧЕСКИЙ СОСТАВ КРОВИ И СТРУКТУРНЫЕ ПРЕОБРАЗОВАНИЯ ЯИЧНИКОВ САМОК ГИБРИДА РУССКИЙ ОСЕТР × ЛЕНСКИЙ ОСЕТР (ACIPENSER GUELDENSTAEDTII BRANDT, 1833 × ACIPENSER BAERII BRANDT, 1869) В УСЛОВИЯХ ЗАМКНУТОГО ЦИКЛА ВЫРАЩИВАНИЯ
Отправить рукопись Скачать PDF
Текст
Цитировать
Цитирований:

ВЛИЯНИЕ ИНЪЕКЦИЙ СУРФАГОНА НА БИОХИМИЧЕСКИЙ СОСТАВ КРОВИ И СТРУКТУРНЫЕ ПРЕОБРАЗОВАНИЯ ЯИЧНИКОВ САМОК ГИБРИДА РУССКИЙ ОСЕТР × ЛЕНСКИЙ ОСЕТР (ACIPENSER GUELDENSTAEDTII BRANDT, 1833 × ACIPENSER BAERII BRANDT, 1869) В УСЛОВИЯХ ЗАМКНУТОГО ЦИКЛА ВЫРАЩИВАНИЯ
Сорокина Марина Николаевна 1
Гераскин Петр Петрович 2
Григорьев Вадим Алексеевич 3
Дубовская Анисия Викторовна 4
Левина Ольга Александровна 5
Металлов Геннадий Федорович 6
Пономарева Елена Николаевна 7
Авторы:
1.  Астраханский государственный технический университет (канд. биол. наук, доцент; доцент кафедры аквакультуры и рыболовства)

Федеральный исследовательский центр Южный научный центр Российской академии наук (старший научный сотрудник отдела водных биологических ресурсов бассейнов южных морей)

Россия
2.  Астраханский государственный технический университет (старший научный сотрудник отдела водных биологических ресурсов бассейнов южных морей)

3.  Федеральный исследовательский центр Южный научный центр Российской академии наук (кандидат биологических наук; ведущий научный сотрудник отдела водных биологических ресурсов бассейнов южных морей)

Россия
4.  Астраханский государственный технический университет (лаборант кафедры гидробиологии и общей экологии)

5.  Астраханский государственный технический университет (кандидат сельскохозяйственных наук; доцент кафедры аквакультуры и рыболовства, младший научный сотрудник научно-исследовательской лаборатории «Осетроводство и перспективные объекты аквакультуры»)

6.  Южный научный центр Российской академии наук

7.  Астраханский государственный технический университет (д-р биол. наук, профессор; профессор кафедры аквакультуры и рыболовства)

Федеральный исследовательский центр Южный научный центр Российской академии наук (зав. отделом водных биологических ресурсов бассейнов южных морей, главный научный сотрудник)

Тип:
Статья
DOI:
https://doi.org/10.24143/2073-5529-2018-4-117-131
Страницы:
с 117 по 131
Статус:
Опубликован
Получено:
05.12.2018
Одобрено:
25.12.2018
Опубликовано:
25.12.2018
Классификаторы:
УДК 639.371.2.07.053.1:556.531.4.001.57
ГРНТИ 34.39 Физиология человека и животных
ГРНТИ 62.13 Биотехнологические процессы и аппараты
ГРНТИ 69.01 Общие вопросы рыбного хозяйства
ГРНТИ 69.25 Аквакультура. Рыбоводство
ГРНТИ 69.31 Промышленное рыболовство
ГРНТИ 69.51 Технология переработки сырья водного происхождения
ГРНТИ 87.19 Загрязнение и охрана вод суши, морей и океанов
Язык материала:
русский
Ключевые слова:
установки замкнутого цикла выращивания, осетровые, биохимические показатели, осмоляльность, гормоны, генеративный обмен
Аннотация и ключевые слова
Аннотация (русский):
Особым направлением в технологии воспроизводства рыб является использование замкнутого цикла водоснабжения, что позволяет создавать оптимальные гидролого-гидро-химические параметры для конкретного вида рыб независимо от условий внешней среды. Однако в процессе установления связи с новыми модифицирующими факторами внешней среды (искусственно созданные условия) может нарушаться общая направленность обмена веществ или отдельных биохимических реакций, в частности генеративного обмена. Установлено, что динамика биохимических показателей крови и мочи характеризует интенсивность и направленность генеративного обмена и позволяет оценить вероятность структурных преобразований яичников рыб. Анализ влияния синтетического аналога гормона люлиберина - сурфагона - на самок гибрида русский осетр × ленский осетр ( Acipenser gueldenstaedtii Brandt, 1833 × Acipenser baerii Brandt, 1869), отличающихся низкой упитанностью, выявил стимуляцию обменных процессов. За период исследования низкий уровень белка (16,0-28,0 г/л) под воздействием сурфагона увеличивается на 35,0-38,0 %. При этом на протяжении всего эксперимента у рыб опытных и контрольной групп наблюдался высокий уровень бета-липо-протеидов. Под воздействием препарата уровень бета-липопротеидов увеличился на 58,0 и 61,0 % при введении сурфагона в дозах 0,2 мкг/кг и 2,0 мкг/кг соответственно. Аналогичная тенденция наблюдалась при исследовании предшественника гормонов - холестерина. Под действием сурфагона в различных дозировках отмечается его увеличение с 1,3 г/л до 2,2-2,3 г/л. Таким образом, группы рыб, которым выполнялись инъекции сурфагона, имели определенный тип биохимического статуса и при низком уровне материально-энерге-тических ресурсов реагировали на гормональную стимуляцию. При этом гистологические исследования не выявили кардинальных изменений морфологии гонад.

Ключевые слова:
установки замкнутого цикла выращивания, осетровые, биохимические показатели, осмоляльность, гормоны, генеративный обмен
Текст
Текст (PDF): Читать Скачать
Выращивание объектов аквакультуры в установках с замкнутым циклом водоснабжения считается наиболее прогрессивной рыбоводной технологией [1, 2]. В то же время изъятие любого животного из привычной системы экологических параметров и помещение его в искусственно созданные условия может нарушать общую направленность обмена веществ или отдельных биохимических реакций в процессе установления связи с новыми модифицирующими факторами внешней среды [3]. Показано, что в природных условиях функциональное состояние осетровых рыб строго подчиняется сезонным изменениям параметров водной среды и колебаниям массы кормовых ресурсов [4]. У осетровых, содержащихся в установках замкнутого водообеспечения (УЗВ) при интенсивном кормлении и постоянной температуре, происходит излишняя аккумуляция в гонадах липидных компонентов, что препятствует их нормальному созреванию. Для изменения динамики обменных процессов в нужном направлении в УЗВ понижают температуру воды [5-8]. В контексте этих работ для определения начала корректировки направленности метаболических процессов в целом и репродуктивного цикла сельскохозяйственных животных в частности уже давно используются биохимические показатели крови [9]. Однако методология применения биохимических показателей в целях управления процессом накопления и расходования материально-энергетических ресурсов для инициирования процесса созревания осетровых рыб в искусственных условиях продолжает оставаться предметом активных поисковых исследований [5, 10]. Ряд авторов для изучения активности метаболических процессов у рыб в период созревания гонад в природных условиях и при использовании в рыбоводном процессе исследовали показатели крови, характеризующие жировой, белковый и окислительный обмен [5, 10, 11]. Исследовалась вариабельность активности половых гормонов [12-15]. Скорость оседания эритроцитов (СОЭ), являясь неспецифическим физиологическим показателем, неоднозначно реагирует на репродуктивный цикл. Ранее был установлен диапазон вариабельности СОЭ - 2,0-4,0 мм/ч. Общими направлениями динамики СОЭ являются ее увеличение в процессе созревания рыб и снижение при окончательном созревании [5, 10, 16, 17]. Индикатором активности метаболических процессов в организме рыб является гемоглобин. Концентрация гемоглобина в крови осетровых варьировала в пределах 50,0-80,0 г/л. В период роста ооцитов его концентрация в крови возрастает, снижаясь на этапе завершения этого процесса. Низкое содержание гемоглобина в активной фазе формирования половых продуктов свидетельствует о нарушении генеративного обмена [5, 10, 18-22]. Важнейшим показателем функционального состояния рыб является сывороточный белок. Общий диапазон вариабельности сывороточного белка у осетровых находится в пределах 28,0-40,0 г/л. У самок осетровых, используемых в рыбоводных целях, при низком проценте оплодотворения икры или индифферентности по отношению к гипофизарной инъекции концентрация белка в крови высокая, что указывает на незавершенность процесса созревания. Патологически низкое содержание белка в крови свидетельствует об истощении рыб [5, 10, 18-22]. Развитие ооцитов проходит несколько стадий вителлогенеза. Предшественник основных компонентов желтка, липофосфопротеид (вителлогенин) синтезируется гепатоцитами печени и транспортируется кровью в ооциты [23-26]. В ходе миграции осетровых рыб на нерест уровень бета-липопротеидов, а параллельно и холестерина в крови, повышается. Общий диапазон вариабельности липопротеидов у осетровых - 2,0-10,0 г/л; холестерина 1,0-2,8 ммоль/л. Высокая вариабельность бета-липопротеидов и холестерина в преднерестовый период свидетельствует о значительной степени их использования в процессе формирования гонад [5, 10, 16-19, 22, 27-29]. Исследование водно-солевого обмена у осетровых рыб показало, что естественное созревание гонад вызывает у них изменения регуляции метаболизма воды и электролитов. Под действием стероидных гормонов уменьшается реабсорбция натрия и хлора в почечных канальцах [30]. Гормональная стимуляция созревания осетровых рыб, используемых в рыбоводном процессе, приводит к перераспределению воды в их организме, при этом снижается осмоляльность крови и повышается осмоляльность мочи [10, 31]. Изучению механизмов, регулирующих функционирование генеративного обмена у рыб, посвящено значительное количество работ. Актуальным аспектом исследования репродуктивной физиологии рыб продолжает оставаться гормональная регуляция самых ранних фаз развития половых желез [12-13, 32-36]. Установлено, что репродуктивная функция рыб регулируется двумя гипофизарными гонадотропными гормонами ГТГ-I и ГТГ-II. Также показано, что ГТГ-I стимулирует развитие и функционирование соматической, а ГТГ-II - генеративной части гонады. Снижение чувствительности овариальных фолликулов к гормонам, наблюдаемое особенно в конце сезона размножения, четко коррелирует с изменениями в ультраструктуре клеток фолликулярного эпителия [34]. Предельно истощенные после нереста в природных условиях производители осетровых мигрируют в море и под действием всего спектра привычных для них экологических условий в определенный момент начинают вновь формировать половые продукты [4]. При содержании производителей осетровых и их гибридов в УЗВ подобных экологических условий нет и, прежде всего, отсутствуют сезонная цикличность и многообразие кормовых ресурсов. При постоянно высокой температуре и регулярном питании высококалорийным кормом осетровые по завершении генеративного процесса не истощены, как рыбы-миг-ранты, и не нуждаются в длительном периоде аккумуляции материально-энергетических ресурсов и гормонов гипоталамо-гипофизарной нейросекреторной системы для нового этапа процесса размножения рыб [35, 37, 38]. Ранее было показано, что процесс первичного созревания и длительность межнерестовых интервалов у осетровых рыб и их гибридов при выращивании в контролируемых условиях поддается управлению. Рилизинг-гормоны вентрального гипоталамуса, воздействуя на центральную нервную систему, гипофиз и комплекс висцеральных органов, инициируют нерестовое поведение, способствуют овуляции и спермации, а после завершения нереста участвуют в поддержании метаболического равновесия. Однако в контексте изложенного остается потребность верифицировать биохимические реакции и структурные преобразования яичников, которые происходят в организме гибридов осетровых, содержащихся в УЗВ, в самом начале цикла формирования половых продуктов, индуцированных градуальными инъекциями синтетического аналога гормона люлиберина - сурфагоном [35, 38]. Данное исследование посвящено изучению вариабельности биохимических показателей крови и мочи, характеризующих интенсивность и направленность генеративного обмена и соответствующих им структурных преобразований яичников, индуцированных сурфагоном, у самок русско-ленского осетра с низкой упитанностью. Материалы и методы исследований Исследование было выполнено в 2017 г. в лаборатории водных биоресурсов и аквакультуры на базе научно-экспедиционной базы «Кагальник» Южного научного центра РАН и инновационного центра «Биоаквапарк - научно-технический центр аквакультуры» Астраханского государственного технического университета. В качестве объекта исследования использованы половозрелые не нерестившиеся самки гибрида русский осетр × ленский осетр (далее русско-ленский осетр) в возрасте 5 лет средней массой 632 г, длиной 58,2 см и низкой упитанностью (по Фультону) 0,32 ед. [39]. Экспериментальную рыбу содержали в УЗВ с постоянным термическим и гидрохимическим режимом: температурой воды 22-24 °С, насыщением воды кислородом 70,0-80,0 %, значением рН 7,5-7,9. До начала экспериментальных работ рыба длительное время содержалась в бассейне объемом 15 м3 с замкнутой системой водоснабжения совместно с крупными производителями осетровых. Температура воды в этом бассейне колебалась в пределах 10,0-21,0 °С. На фоне относительно низких температур, тотального дефицита корма и высокой плотности опытные рыбы не смогли реализовать соответствующие возрасту потенциальные возможности пластического и генеративного обмена. Известно, что в оптимальных температурных условиях (22,0-24,0 °С) и при соответствующем кормлении самки гибрида русско-ленского осетра в возрасте 5 лет могут впервые созреть и достигнуть средней массы 7 кг. При работе с осетрами в УЗВ прослеживается определенная связь периодичности размножения с размерами осетровых рыб [2, 38]. Исследование проводили в пластиковых бассейнах системы замкнутого водообеспечения (1 × 1 м) на трех группах рыб на протяжении 10 дней. Одна группа осетров выступала в качестве контрольной, две другие - опытных. Кормление осуществляли продукционным комбикормом фирмы «БИОМАР» № 3-4. Суточную норму кормления определяли в зависимости от массы тела и температуры воды по специальным кормовым таблицам [40]. Инъекцирование проводили через равные промежутки времени (табл. 1). Таблица 1 Схема использования синтетического аналога гормона люлиберина (сурфагон) в эксперименте Группа Концентрация сурфагона, мкг/кг массы Группа 1 (контроль) - Группа 2 0,2 Группа 3 2,0 Для анализа гематологических показателей кровь у рыб брали прижизненно из хвостовой вены с помощью медицинского шприца. Физиологическое состояние оценивали по содержанию в крови гемоглобина, СОЭ, сывороточного белка, бета-липопротеидов, холестерина. Концентрацию гемоглобина в крови определяли фотометрически с помощью набора реактивов фирмы «Агат-Мед» [41], СОЭ - по методу Панченкова, содержание сывороточного белка - с помощью рефрактометра ИРФ-22 [42, 43]. Уровень холестерина в крови оценивали энзиматическим методом с использованием набора реактивов фирмы «Ольвекс Диагностикум» [44], количество бета-липопротеидов - по методу Бурштейна [45]. Осмоляльность сыворотки крови и мочи определяли криоскопическим методом на осмометре ОСКР-1. Анализ морфофункционального состояния половых желез проводился стандартными гистологическими методами [46]. Половые железы были зафиксированы в 10,0 % формалине. Для просмотра препаратов использовался микроскоп OLYMPUS ВХ40, а для изготовления микрофотографий - цифровая камера-окуляр для микроскопа DCM500. Экспериментальный материал обработан вариационно-статистическими методами [47]. Анализ осуществляли с помощью критерия t-Стьюдента. Результаты исследований Исследование скорости оседания эритроцитов у всех экспериментальных групп русско-ленского осетра, включая инъецированных сурфагоном, выявило высокую вариабельность СОЭ (рис. 1). Рис. 1. Вариабельность СОЭ у русско-ленского осетра под влиянием инъекций сурфагона Установленная ранее у других видов осетровых рыб тенденция к увеличению СОЭ при введении гормонов гипофиза и овуляции половых продуктов показана и у русско-ленского осетра, но она не подтверждена статистической достоверностью [17]. Прямо противоположно динамика СОЭ у русско-ленского осетра соотносилась с динамикой осмоляльности сыворотки крови. В начале эксперимента ее величина снижалась, а затем увеличивалась у рыб как в контрольной, так и в опытных группах. После инъекции сурфагона в дозе 2,0 мкг/кг при аналогичной тенденции выявить достоверные различия не удалось (табл. 2). Таблица 2 Вариабельность осмоляльности сыворотки крови и мочи у русско-ленского осетра под влиянием инъекций сурфагона Показатель Период исследования, сут Группа 1 Группа 2 Группа 3 M ± m V, % M ± m V, % M ± m V, % Сыворотка крови 0 254,00 ± 8,55* 5,00 260,00 ± 1,78** 1,00 258,00 ± 3,90 2,00 5 196,00 ± 19,00* 13,00 233,00 ± 6,42** 6,00 234,00 ± 21,00 12,00 10 261,00 ± 2,12* 2,00 256,00 ± 1,47** 1,00 252,00 ± 4,42 16,00 Моча 0 101,00 ± 13,47** 19,00 70,00 ± 24,50 49,00 102,00 ± 3,74** 5,00 5 30,00 ± 3,54 17,00 75,00 ± 20,00 37,00 41,00 ± 1,48** 2,00 10 30,00 ± 7,07** 33,00 33,30 ± 10,80 10,80 25,33 ± 9,1** 51,00 *р ≤ 0,01; **р ≤ 0,001. С высокой степенью достоверности у самок русско-ленского осетра снижалась осмоляльность мочи. Противоположная тенденция выявлена ранее у самок гибрида стерлядь × белуга с высокими массовыми характеристиками. В процессе репродуктивного цикла у этих рыб осмоляльность мочи росла параллельно увеличению степени зрелости половых продуктов и снижалась только после искусственной зимовки, т. е. после завершения репродуктивного цикла [17]. Таким образом, у самок русско-ленского осетра, не достигших к пятилетнему возрасту необходимых массовых характеристик, не выявлено очевидных признаков влияния сурфагона на динамику показателей, характеризующих водно-солевой обмен. Достоверная вариабельность характеризующих его показателей, вероятно, определилась комплексным воздействием всех факторов, включая исходное физиологическое состояние рыб и экологию окружающей среды. У контрольной и опытных групп русско-ленского осетра, характеризующихся низкой упитанностью, концентрация гемоглобина в крови находилась в пределах нижней границы диапазона (50,0-80,0 г/л), установленного для рыб в процессе нерестовой миграции в природных условиях (рис. 2). Рис. 2. Уровень гемоглобина у самок русско-ленского осетра под влиянием инъекций сурфагона Ранее было показано, что у производителей осетровых рыб, выдерживаемых в искусственных условиях при нерестовых температурах, отмечается низкий уровень гемоглобина. Вероятно, в отсутствие миграционного периода потребность в дополнительной энергии у этих рыб снижается [5, 10, 21, 48, 50]. У самок гибрида стерлядь × белуга, ранее использованных в рыбоводном цикле и характеризующихся высокими массовыми характеристиками, выявлена аналогичная тенденция до начала искусственной зимовки. После зимовки уровень гемоглобина достоверно увеличивался в связи с потребностью в дополнительной энергии для окончательного завершения процесса формирования гонад [10]. У всех групп русско-ленского осетра, характеризующихся слабой упитанностью, выявлена исключительно низкая концентрация белка в крови (рис. 3). Рис. 3. Вариабельность общего сывороточного белка у русско-ленского осетра под влиянием инъекций сурфагона Ранее установленный более высокий диапазон варьирования значений этого показателя (28,0-40,0 г/л) наблюдался у производителей осетровых рыб с высокими массовыми характеристиками из естественных водоемов и при использовании на рыбоводных заводах, включая гибридов. У производителей (как в природной среде, так и при рыбоводном освоении) концентрация белка в крови увеличивается при созревании гонад. У истощенных рыб отмечен исключительно низкий уровень белка 17,0-21,0 г/л [5, 10, 16]. У экспериментальных рыб при низком исходном уровне белка и воздействии сурфагоном выявлена статистически недостоверная тенденция к его увеличению. Исключительно низкой концентрации сывороточного белка у контрольных и опыт-ных групп русско-ленского осетра соответствовала относительно высокая концентрация бета-липопротеидов (табл. 3). Таблица 3 Вариабельность бета-липопротеидов в крови у самок русско-ленского осетра под влиянием инъекций сурфагона Показатель Вариабельность бета-липопротеидов, г/л 0 сут 5 сут 10 сут Группа 1 М ± m 4,37 ± 1,43 5,52 ± 1,19 3,94 ± 0,29 V, % 46,00 30,00 10,00 Группа 2 М ± m 2,21 ± 0,34* 4,58 ± 1,10** 5,71 ± 0,77** V, % 22,00 34,00 19,00 Группа 3 М ± m 2,74 ± 0,31* 4,80 ± 0,76* 6,62 ± 1,56* V, % 16,00 22,00 33,00 *р ≤ 0,05; **р ≤ 0,001. Анализ вариабельности бета-липопротеидов у опытных самок гибрида русско-ленского осетра в вариантах с инъекцией сурфагона в дозах 0,2 и 2,0 мкг/кг выявил ранее установленную тенденцию к увеличению транспорта этого биохимического субстрата у осетровых рыб при естественном созревании рыб в ходе нерестовой миграции [27]. Аналогичная тенденция выявлена у рыб при использовании на рыбоводных заводах по традиционной технологии. Индифферентные к гормональной стимуляции рыбы имели повышенный уровень бета-липопротеидов и белка в крови. Истощенные рыбы характеризовались низким содержанием их в крови. В первом случае производители имели полный набор материально-энергетических ресурсов, но не достигли функциональной кондиции для реализации гонадотропной функции. У второй группы рыб на фоне низкого уровня транспорта белка и бета-липопротеидов таковых запасов не было [5]. Исследованные ранее самки гибрида стерлядь × белуга с высокими массовыми характеристиками имели нормальный уровень бета-липо-протеидов на фоне высоких значений сывороточного белка в крови. В процессе созревания эти рыбы дали положительный рыбоводный результат [10]. Менее интенсивно у опытных групп русско-ленского осетра, которым выполнялись инъекции сурфагона в различных дозах, активизировался транспорт в крови холестерина (табл. 4), являющегося предшественником гормонов и участвующего в формировании ооцитов [49]. Таблица 4 Вариабельность холестерина в крови у самок русско-ленского осетра под влиянием инъекций сурфагона Показатель Вариабельность холестерина в крови, г/л 0 сут 5 сут 10 сут Группа 1 М ± m 1,94 ± 0,49 1,91 ± 0,28 2,06 ± 0,13 V, % 36,00 21,00 9,00 Группа 2 М ± m 1,35 ± 0,21 1,90 ± 0,27* 2,30 ± 0,29* V, % 22,00 20,00 18,00 Группа 3 М ± m 1,36 ± 0,18 1,61 ± 0,22* 2,21 ± 0,20* V, % 18,00 20,00 13,00 *р ≤ 0,01. Выявленная тенденция оказалась статистически достоверной. У диких производителей в период нерестовой миграции концентрация холестерина в крови, от начала активного созревания до завершения процесса, увеличивается более чем в 2 раза [16]. Самки гибрида стерлядь × белуга, исследованные ранее, с высокими массовыми характеристиками, высоким уровнем сывороточного белка и бета-липопротеидов, имели нормальный уровень транспортируемого кровью холестерина [10]. Опытная группа русско-ленского осетра с исключительно низкими для данной возрастной группы массовыми характеристиками имела определенный тип биохимического статуса, когда при низком уровне материально-энергетических ресурсов физиологически реагировала на гормональную стимуляцию гонадотропного процесса. Гистологическое исследование гонад контрольной и опытных групп русско-ленского осетра показало, что у всех рыб завершена цитоморфологическая дифференциация пола (рис. 4). а б в Рис. 4. Морфологическая картина контрольных особей (а - самка 1; б - самка 2; в - самка 3) русско-ленского осетра (окраска кислым фуксином с докраской по Маллори; увеличение 22 × 4) г д е ж з Рис. 4 (окончание.) Морфологическая картина опытных особей (г - самка 5; д - самка 6; е - самка 7; ж - самка 8; з - самка 9) русско-ленского осетра (окраска кислым фуксином с докраской по Маллори; увеличение 22 × 4) Уровень развития яичников большинства самок соответствовал второй стадии зрелости гонад. В яичниках хорошо выражены яйценосные пластинки, заметные визуально. Среди половых клеток преобладали ооциты фазы однослойного фолликула (протоплазматического роста). У всех самок имелись деформированные ооциты, часть из которых дегенерировали. В минимальной степени это было выражено у самок № 2 и № 6. Наиболее развиты оказались железы у самки № 5, в периферическом слое цитоплазмы отдельных ооцитов старшей генерации которой имелись скопления мелких гранул желтка. В единичных икринках они располагались почти по всей поверхности цитоплазмы. В целом степень зрелости этого яичника можно оценить как II-III [51]. Гистологический анализ экспериментальных рыб показал, что выраженного различия в уровне развития половых желез между контрольной и опытной группами рыб не выявлено. Заключение Таким образом, у экспериментальных особей русско-ленского осетра, имеющих для данной возрастной категории исключительно низкую упитанность, характерную для производителей осетровых рыб после нереста в природных условиях, под влиянием сурфагона выявлена активизация транспорта в крови белка, бета-липопротеидов и холестерина - важнейших биохимических компонентов процесса формирования половых продуктов. В период нормального репродуктивного цикла осмоляльность сыворотки крови снижается, а осмоляльность мочи растет параллельно увеличению степени зрелости половых продуктов. У экспериментальных рыб этот процесс идет в обратном направлении. Группы рыб, инъецированные сурфагоном, имели определенный тип биохимического статуса, когда при низком уровне материально-энергетических ресурсов реагировали на гормональную стимуляцию, кардинально не меняя морфологию гонад. Вероятно, в условиях дефицита кормов материально-энергетические ресурсы, потребляемые рыбой, должны идти в первую очередь на генетически обусловленные объемы массы, по достижении которой начинается полноценное формирование гонад. Поэтому управление функциональной направленностью биохимических реакций в процессе формирования половых продуктов у осетровых рыб в УЗВ с применением искусственных кормов должно осуществляться через гормональное регулирование темпа первоначального накопления оптимальной массы тела с прицелом на дискретное формирование соматической и генеративной части гонад с учетом генетически обусловленных потенций исходных видов.
Список литературы

1. Жигин А. В. Замкнутые системы в аквакультуре. М.: Изд-во ВНИРО, 2011. 664 с.

2. Филиппова О. П., Зуевский С. Е. Перспективы выращивания гибрида русского осетра с сибирским осетром в России // Стратегия 2020: интеграционные процессы образования, науки и бизнеса как основа инновационного развития аквакультуры в России: сб. тр. Междунар. науч.-практ. форума. М.: Изд-во МГУТУ, 2009. С. 56-66.

3. Биологические ритмы / под ред. Ю. Ашоффа: в 2 т. М.: Мир, 1984. 830 с.

4. Ходоревская Р. П., Рубан Г. И., Павлов Д. С. Поведение, миграции, распределение и запасы осетровых рыб Волго-Каспийского бассейна. М.: Т-во науч. изд. КМК, 2007. 242 с.

5. Металлов Г. Ф., Гераскин П. П., Аксёнов В. П. Физиолого-биохимические аспекты оценки рыбоводного «качества» самок севрюги Acipenser stellatus (Pall.) // Рыб. хоз-во. Сер.: Аквакультура. 1997. Вып. 7. С. 4-14.

6. Пономарёв С. В. Технология содержания и кормления разновозрастных осетровых рыб при низ-кой температуре воды (теоретические и практические основы). Астрахань: Альфа-Аст, 2005. 20 с.

7. Пономарёва Е. Н. Технологии сохранения и рационального использования морских биологических ресурсов в прибрежных зонах: науч.-практ. рекомендации. Ростов-н/Д: Изд-во Юж. науч. центра РАН, 2010. 58 с.

8. Чебанов М. С., Галич Е. В. Руководство по искусственному воспроизводству осетровых рыб // Технический доклад ФАО по рыбному хозяйству. Анкара, 2013. 371 с.

9. Гордон А. Контроль воспроизводства сельскохозяйственных животных. М: Агропромиздат, 1988. 415 с.

10. Металлов Г. Ф., Пономарёва Е. Н., Сорокина М. Н., Григорьев В. А., Корчунов А. А. Функциональная направленность биохимических процессов у самок гибрида стерлядь × белуга (Acipenser ruthenus Linnaeus, 1758 × Huso huso Linnaeus, 1758) в репродуктивном цикле // Докл. Акад. наук. 2018. Т. 478. № 6. С. 37-39.

11. Коротенко А. В. Самки русского осетра с различными физиолого-рыбоводными характеристиками // Естеств. науки. 2011. № 1 (34). C. 157-161.

12. Бурлаков А. Б. Изменение содержания и активности гонадотропинов в гипофизе русского осетра на разных стадиях зрелости гонад // Науч. докл. высш. школы. Биол. науки. 1978. № 12. С. 36-40.

13. Баранникова И. А., Боев А. А., Буковская О. С., Ефимова Н. А. Гормональная регуляция репродуктивной функции у осетровых и биотехника стимуляции созревания производителей в осетроводстве // Биологические основы осетроводства. М.: Наука, 1983. C. 22-42.

14. Фадеева Т. А., Буковская О. С. Характеристика состояния половых желёз и гонадотропной функции гипофиза самок русского осетра и севрюги в морской период жизни // Экологическая физиология и биохимия рыб: тез. докл. VI Всесоюз. конф. Вильнюс, 1985. С. 438-440.

15. Lu X., Webb M., Talbot, M., Van Eenennaam J., Palumbo A., Lunares-Casensve J., Doroshov S., Struffenegger P., Rasco B. Distinguishing ovarian maturity of farmed white sturgeon (Acipenser transmontanus) by Fourier transform infrared spectroscopy: a potential tool for caviar production management // Journal of Agricultural and Food Chemistry. 2010. N. 58 (7). P. 4056-4064.

16. Шелухин Г. К. Физиолого-биохимические параметры осетровых в морской и речной периоды жизни: автореф. дис. … канд. биол. наук. Петрозаводск, 1974. 20 с.

17. Гапонов B. C. РОЭ у ходовых и инъецированных производителей осетровых // Тез. докл. отчет. сессии ЦНИОРХа. Астрахань, 1974. С. 35-36.

18. Баденко Л. В., Голованенко Л. Ф., Груданова С. Д. О влиянии физиологического состояния самок севрюги на качество икры и потомство // Тр. ЦНИОРХ. 1972. Т. IV. С. 191-199.

19. Баденко Л. В., Алтухова Л. А., Шиленко Г. Г., Щигельская В. П. Энергетические и пластические траты производителей осетровых при различном режиме их выдерживания на рыбоводных заводах // Осетровое хозяйство внутренних водоёмов СССР: тез. и реф. II Всесоюз. совещ. (26 февраля - 2 марта 1979 г.). Астрахань: Волга, 1979. С. 23.

20. Долидзе Ю. Б. Сравнительный биохимический анализ функционального состояния производителей белуги в естественных и заводских условиях // Рациональные основы ведения осетрового хозяйства: тез. докл. науч.-практ. конф. Волгоград, 1981. С. 71-73.

21. Долидзе Ю. Б. Влияние длительности резервирования самок белуги при нерестовой температуре на физиолого-биохимические показатели крови и рыбоводное качество икры // Рациональные основы ведения осетрового хозяйства: тез. докл. науч.-практ. конф. Волгоград, 1981. С. 73-75.

22. Лукьяненко В. И., Кулик П. В. Физиолого-биохимическая и рыбоводная характеристика разновозрастных производителей волго-каспийских осетровых в связи с проблемой их искусственного воспроизводства. Рыбинск: Рыб. дом печати, 1994. 270 с.

23. Равен Х. Оогенез. М.: Мир, 1964. 274 с.

24. Ando S. Physiological study on egg formation of the fish. I. Accumulation of carbohydrates and proteins during oogenesis // Embryologia. 1960. V. 5. N. 3. P. 239-246.

25. Terner C. Metabolism and energy conversion during early development // Fish physiology. N. Y.: Acad. press, 1979. V. 8. P. 261-278.

26. Selman K., Wallace R. A. Oogenesis in Fundulus heteroclitus. III. Vitellogenesis // J. Exp. Zool. 1983. V. 226. N. 3. P. 441-457.

27. Субботкин М. Ф. Концентрация сывороточных бета-липопротеидов у каспийских осетровых в морской и речной периоды жизни // Осетровое хозяйство внутренних водоемов СССР. 1979. 253 с.

28. Шелухин Г. К., Арутюнова Н. В., Аксенов В. П., Васильева Е. Ю., Баль Н. В. Анализ функциональной разнокачественности осетровых в преднерестовый период как форма контроля «степени благополучия» состояния популяции // Первый симпозиум по экологической биохимии. Ярославль, 1987. С. 217-219.

29. Комова Н. И. Вариабельность биохимических показателей некоторых карповых рыб в преднерестовый период // Биологические ресурсы Белого моря и внутренних водоемов Европейского Севера: материалы XXVIII Междунар. конф. (Петрозаводск, 5-8 октября 2009 г.). Петрозаводск: КарНЦ РАН, 2009. C. 292-296.

30. Magnin E. Recherches sur la sistematique et la biologie de acipenserides (A. sturio, A. oxyrhynchus, A. fulvescens) // Ann. Stat. Centr. Hydrob. 1962. V. 9. P. 170-242.

31. Металлов Г. Ф., Пономарев С. В., Аксенов В. П., Гераскин П. П. Физиолого-биохимические механизмы эколого-адаптационной пластичности осморегулирующей системы осетровых рыб: моногр. Астрахань: Изд-во АГТУ, 2010. 192 с.

32. Гербильский Н. Л. Гонадотропная функция гипофиза у костистых и осетровых // Тр. Лаб. основ рыбоводства. 1947. Т. 1. С. 25-96.

33. Казанский Б. Н. Закономерности гаметогенеза и экологическая пластичность размножения рыб // Экологическая пластичность половых циклов и размножения у рыб. Л.: Изд-во ЛГУ, 1975. С. 3.

34. Бурлаков А. Б. Гормональная регуляция репродуктивной функции у икромечущих рыб: автореф. дис. … д-ра биол. наук. М., 2002. 48 с.

35. Гарлов П. Е. Разработка биотехники воспроизводства популяций рыб на основе эколого-гисто-физиологических и экспериментальных полносистемных исследований // Современное состояние биоресурсов внутренних водоёмов: материалы докл. I Всерос. конф. с междунар. участием (Борок, Россия, 12-16 сентября 2011 г.). М.: Акварос, 2011. С. 151-159.

36. Фёдоров К. Е. Гормональные аспекты регуляции раннего гамето- и гонадогенеза рыб // Проблемы надежности функционирования репродуктивной системы у рыб // Тр. Биол. НИИ СПбГУ. 1997. Вып. 44. С. 100-116.

37. Пономарёв С. В., Иванов Д. И. Осетроводство на интенсивной основе. М.: Колос, 2009. 312 с.

38. Подушка С. Б. Периодичность размножения осетровых (литературный обзор) // Экология и гистофизиология размножения гидробионтов: межвуз. сб. Л.: Изд-во Ленингр. ун-та, 1989. С. 43-75.

39. Дедю И. И. Коэффициент упитанности рыб // Экологический энциклопедический словарь. Кишинев, 1989. 58 с.

40. Пономарев С. В., Гамыгин Е. А., Никоноров С. И., Пономарева Е. Н., Грозеску Ю. Н., Бахарева А. А. Технологии выращивания и кормления объектов аквакультуры юга России. Астрахань: Нова плюс, 2002. 264 с.

41. Van Kampen E. J., Zijlstra W. G. Standardization of hemoglobinometry. II. The hemoglobincyanide method // Clin. Chim. Acta. 1961. V. 6. Р. 538-545.

42. Меньшиков В. В. Клиническая лабораторная аналитика. М.: Агат-Мед, 2002. 860 с.

43. Филиппович Ю. Б., Егорова Т. А., Севастьянова Г. А. Практикум по общей биохимии. М.: Просвещение, 1975. 318 с.

44. Fishbach F., Dunning M. A manual of laboratory diagnostic tests. Lppincott Williams & Wilkins, 2004. 1291 p.

45. Методы исследований в профпатологии (биохимические) / под ред. О. Г. Архиповой. М.: Медицина,1988. 208 с.

46. Ромейс Б. Микроскопическая техника. М.: Изд-во иностр. лит., 1954. 718 с.

47. Лакин Г. Ф. Биометрия. М.: Высш. шк., 1990. 293 с.

48. Кулик П. В. Влияние кратковременного выдерживания самок осетра на их рыбоводно-физио-логические показатели // Рациональные основы ведения осетрового хозяйства: тез. докл. науч.-практ. конф. Волгоград, 1981. С. 130-131.

49. Кнорре Д. Г., Мызина С. Д. Биологическая химия. М.: Высш. шк., 2000. 476 с.

50. Металлов Г. Ф., Распопов В. М., Аксенов В. П., Чипинов В. Г. Биохимические и морфофизиологические показатели русского осетра в современных экологических условиях Волго-Каспия // Тепловодная аквакультура и биологическая продуктивность водоемов аридного климата: материалы и докл. Междунар. симп. (Астрахань, 16-18 апреля 2007 г.). Астрахань: Изд-во АГТУ, 2007. С. 484-486.

51. Трусов В. З. Созревание половых желез волго-каспийского осетра в морской период жизни // Тр. ЦНИОРХ. 1972. Т. IV. С. 95-122.

Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 3.0 Unported

© "Редакция научных журналов"
Поддержка Powered by Editorum,  Инструкции
Войти или Создать
* Забыли пароль?