Россия
Россия
УДК 575.22 Генотипическая изменчивость. Генотип
Целью работы является изучение выращивания растений в аквапонической системе с добавлением бактериального изолята, обладающего хозяйственно полезными свойствами. В рамках исследования проводилось совместное культивирование растений с продолжительным вегетационным периодом (баклажан, клубника, кабачок) и мозамбикской тиляпии (Oreochromis mossambicus) в условиях аквапонной системы от всходов до сбора зеленой массы растений. Выявлено положительное воздействие штамма Serratia ficaria TP3 на прорастание семян. Всхожесть растений в опытных группах превышала контрольные показатели на 1–3 %. Стимуляция роста проявилась в увеличении длины стебля клубники на 5,4 % и сырой массы на 38,5 %; у кабачка эти показатели возросли на 3,73 и 3,26 % соответственно. У баклажана длина стебля в опыте была незначительно ниже контроля (на 1,44 %), сырая масса оказалась ниже на 6,57 %. Тиляпия за весь период набрала в среднем 125,24 г массы, что соответствует суточному приросту 2,09 г, или 0,97 % в день, при коэффициенте накопления массы 0,058 ед. Выживаемость рыб составила 100 %. Гидрохимические параметры находились в пределах нормы: pH варьировался от 7,3 до 8,1 в бассейне с рыбой и от 7,3 до 7,8 в лотке с растениями; концентрация кислорода составляла 7,8–8,8 и 7,3–9,0 мг/л соответственно. Температуру воды поддерживали на уровне 25–26 °C. Содержание нитритов колебалось в диапазоне 0,014–0,031 мг/дм³, нитратов – 18,5–51,45 мг/дм³.
растения, аквапоника, бактериальный изолят, установка замкнутого водоснабжения
Введение
Развитие биотехнологий оказывает существенное влияние на аквакультуру, стимулируя разработку новых продуктов, оптимизацию ресурсного использования и усложнение технологических процессов. Российская Федерация обладает значительным потенциалом в области рыбного хозяйства и аквакультуры, что обуславливает приоритетность развития данных отраслей для обеспечения стабильного использования ресурсов и производства высококачественной продукции. Аквапоника представляет собой технологию, объединяющую аквакультуру и гидропонику в единый замкнутый цикл. Совместное выращивание и правильно подобранные условия среды позволяют достичь устойчивого роста гидробионтов и растений, при этом выращивание растений и гидробионтов происходит в кратчайшие сроки. Постоянная циркуляция воды, выращивание различных рыб и одновременно растений, которые получают биологические вещества для своего развития, создают единую многоуровневую систему: рыбы производят продукты жизнедеятельности, которые перерабатываются бактериальными культурами в доступные формы для растений для получения экологически чистой продукции [1, 2].
Аквапоника является экологически чистой технологией благодаря созданию устойчивых условий выращивания и эффективности работы, т. к. она решает ряд проблем традиционного сельского хозяйства: минимизировать расход воды и исключить использование пестицидов и гербицидов, решить проблемы с истощением земель, загрязнением пресной воды. В России проводятся исследования [3] и существуют действующие проекты по совместному выращиванию гидробионтов и растений (AquaVega, КФХ «Аквапоника»). Используются установки различной конструкции в Астраханском государственном техническом университете, Южном научном центре Российской академии наук (ЮНЦ РАН), Краснодарском научном центре по зоотехнии и ветеринарии, Всероссийском научно-исследовательском институте рыбного хозяйства и океанографии [4, 5]. Использование разных по объему модульных систем с замкнутым циклом водоснабжения для получения товарной рыбопродукции при высоких плотностях посадки является перспективным направлением аквакультуры [6]. Но увеличение плотности посадки рыб приводит к повышению концентрации азотистых веществ в водной среде. Для решения этой проблемы целесообразно создавать искусственные экосистемы на базе установок замкнутого водоснабжения (УЗВ), в состав которых входят модули по выращиванию объектов аквакультуры и растений.
В УЗВ можно выращивать различные виды рыб, креветок, моллюсков, раков, а также создавать агрогидросистемы для выращивания овощей, зелени, клубники и т. д. [7, 8]. В совмещенной системе отходы жизнедеятельности объектов аквакультуры (корм, фекалии) после механического фильтра могут поступать в емкости с растениями. С использованием новых микробиологических бактериальных штаммов (например, штамма Serratia ficaria TP3) [9] остатки жизнедеятельности рыб и взвешенные частицы преобразуются в минеральный раствор, который служит для питания растений в системе гидропоники. Затем использованная жидкость проходит фильтрацию, насыщается кислородом и снова поступает в рыбоводные емкости. Подобные установки позволяют получать экологически чистую продукцию растительных культур и снижать затраты на выращивание гидробионтов [7, 8].
Использование в данных установках микробиологических штаммов, обладающих полезными биологическими свойствами, – одно из фундаментальных научных решений, которое позволяет улучшать условия выращивания и наладить весь цикл выращивания. Большую роль играют микробиологические штаммы (Nitrosomonas, Nitrobacter) для очищения воды, позволяя удалять загрязняющие вещества, содержащиеся в сточных водах, или превращать их в безвредные продукты [6]. Использование микробиологических штаммов в системах аквапоники – одно из новых направлений, позволяющих экологизировать специализированные системы по производству товарной высококачественной продукции. Целью работы является изучение выращивания растений в аквапонической системе с добавлением бактериального изолята, обладающего хозяйственно полезными свойствами.
Материал и методы исследований
Исследования проводили в ЮНЦ РАН. Объектами исследования являлись тиляпия мозамбикская (Oreochromis mossambicus L.) и сельскохозяйственные культуры: баклажан (Solanum melongena L., 1753), сорт «Аметист» (включен в Государственный реестр селекционных достижений РФ); клубника (Fragaria moschata L., 1753) – земляника садовая, сорт «Сашенька F1»; кабачок (Cucurbita pepo subsp. pepo), сорт «Маша F1» (включен в Государственный реестр селекционных достижений, допущенных к использованию в РФ). При выборе растений для выращивания методом аквапоники учитывали следующие критерии: гибрид (для возможного самоопыления), скороспелые (возможно среднеспелые), компактные.
Для экспериментов использовали аквапоническую установку (рис. 1).
Рис. 1. Принципиальная схема аквапонической установки
Fig. 1. Schematic diagram of an aquaponic installation
Вода из рыбоводного бассейна объемом 1 м3 по трубопроводу диаметром 110 мм поступает в самотечном режиме в барабанный фильтр с фильтрующей микросеткой размером 40 мкм, затем, также
в самотечном режиме, вода из фильтра поступает в бассейн-сумматор, который тоже выполняет роль биологического фильтра. Далее при помощи центробежного асинхронного насоса с префильтром по первой трубопроводной линии технологическая вода подается в три лотка, в каждый при помощи шаровых кранов. В каждом лотке высажены растения в соответствии с требованиями к субстрату (плавающие, рафт-система). В установку посадили 1 580 экз. тиляпии средней массой 160 г, общая биомасса рыбы составила 24 000 г на 1 м3. Кормление рыб проводилось в соответствии с ор-
ганической нагрузкой на системы аквапоники [10]. Кормление проводили комбикормом Coppens vital со следующим составом: протеин – 44 %, жир – 16 %. Эффективность выращивания тиляпии оценивалась по приросту (абсолютному и среднесуточному), среднесуточной скорости роста и коэффициенту массонакопления [11].
Состояние водной среды оценивалось по гидрохимическим показателям: рН, содержание кислорода О2, нитритов NO2, нитратов NO3. Температурный режим поддерживался в оптимальном диапазоне от 25 до 27 ºС, обеспечивающем благоприятные условия для роста растений и жизнедеятельности рыб. Семена опытной группы растений перед посадкой в аквапоническую установку обрабатывали заранее подготовленной культуральной жидкостью Seratia ficaria TP3 в рабочей концентрации 109 КОЕ/мл. В контрольной группе семена замачивали в воде. Приготовление рабочего раствора культуры Serratia ficaria TP3 проходило по следующей схеме:
1. Для культивирования штамма использовали агар, который стерилизовали при 120 °С 30 мин. Культуру пересевали в чашки Петри.
2. Суспензию изолята получали путем внесения двух петель биомассы трехсуточной культуры Serratia ficaria ТP3 со скошенного агара и вносили в 200 мл жидкого агара, культивировали на качалке при непрерывном перемешивании (120 об/мин) в течение 24 ч при температуре 28 °С.
3. Рабочий раствор готовили путем внесения 50 мл жидкого раствора в 1 л отвара картофеля и культивировали его на качалке (120 об/мин) в течение 48 ч при температуре 28 °С при непрерывном перемешивании. В готовом растворе концентрация клеток составила 109 КОЕ/мл, замеры проводили путем высева и подсчета клеток.
4. Растения заранее замачивали в рабочем растворе и затем сажали в рафт-систему модельной установки.
В эксперименте выделяли следующие основные периоды:
– первый период – от посева семян до появления проростка, семена замачивали в рабочем растворе культуральной жидкости исследуемого штамма;
– второй период начинался с появления проростка и заканчивался образованием 3–4 сформировавшихся листа;
– третий период – формирование соцветия и зачатков цветков;
– четвертый период соответствует фенофазе бутонизации и цветения;
– пятый период соответствует фенофазе плодоношения.
В качестве субстрата использовали керамзит (средней фракции, до 1 см в диаметре), т. к. в нем корневая система растений хорошо удерживается и развивается. При выращивании растений на вермикулите и кокосовом волокне происходило сильное вымывание этих субстратов при циркуляции воды в установке. Минеральную вату использовали при выращивании рассады, постоянное нахождение ее в воде вызывает появление синезеленых водорослей, что приводит к загниванию растений. Для проращивания семян растительных культур были использованы гидропонные лотки с пробками из минеральной ваты. В углубления пробок минерального субстрата, предварительно напитанных водой, которая была обработана бактериальной культурой из бассейна с тиляпией, поместили 1 семя кабачка, 2 – баклажана, 2 – клубники и засыпали сверху вермикулитом мелкой фракции. Для определения всхожести были использованы пробы по 100 семян. Для каждого сорта растения было задействовано по 15 пробок минеральной ваты. После подращивания растений, появления двух листьев и корня через 10–12 сут каждое растение рассаживали в пластмассовые горшочки с керамзитом и помещали в гидропонные плавающие маты, которые помещают в бассейны (рыбоводных емкостей) с рыбами. Освещение растений при выращивании производилось лампами мощностью 200–300 лк, которые находились над растениями на расстоянии 40 см. Продолжительность эксперимента составила 60 сут. Перед посадкой в систему проводили сравнение растений в опыте и в контроле.
Статистическая обработка полученных данных проводилась с использованием среднего значения и стандартной ошибки (М ± m). Для сравнения групп применялся t-критерий Стьюдента при нормальном распределении и критерий Манна – Уитни – при его отсутствии.
Результаты исследования и обсуждение
Растения. В ходе проведенного исследования было установлено, что в опыте, по сравнению с семенами в контроле, развитие семян клубники происходило с первых дней. Всхожесть семян в опытной группе была 98 %, в контрольной – 95 %.
В опытной группе наблюдалось увеличение высоты стебля и сырой массы клубники в 2,8 раза, при этом количество листьев возросло от 4 до 9 шт. (табл. 1).
Таблица 1
Table 1
Показатели роста клубники «Сашенька F1»
Indicators of strawberry growth “Sashenka F1”
|
Время |
Опыт |
Контроль |
||||
|
Длина |
Количество листьев, шт. |
Сырая |
Длина |
Количество листьев, шт. |
Сырая |
|
|
10 |
12,26 ± 0,07 |
4 |
19,05 ± 0,08b |
12,13 ± 0,03 |
3 |
12,08 ± 0,03b |
|
20 |
14,37 ± 0,05a* |
6 |
21,04 ± 0,03b |
13,04 ± 0,03a |
4 |
23,04 ± 0,04b |
|
30 |
21,04 ± 0,02a |
7 |
22,04 ± 0,02b |
20,29 ± 0,05a |
4 |
26,11 ± 0,03b |
|
40 |
22,76 ± 0,03 |
8 |
28,07 ± 0,03 |
22,06 ± 0,04 |
5 |
28,03 ± 0,02 |
|
50 |
30,23 ± 0,04a |
8 |
35,07 ± 0,04b |
28,05 ± 0,04a |
6 |
37,06 ± 0,03b |
|
60 |
33,74 ± 0,04a |
9 |
54,07 ± 0,03b |
32,09 ± 0,03a |
6 |
39,04 ± 0,0b |
* a, b – значения cтатистически значимо различаются при p < 0,01.
В контрольной группе соответствующие показатели составили: увеличение длины стебля – в 2,6 раза, сырой массы – в 3,4 раза, количества листьев – от 3 до 6 шт. Через 60 дней выращивания высота стебля в опытной группе достоверно превышала показатели контрольной группы на 5,4 %, а сырая масса – на 38,5 %. Урожайность в опыте составила 2,4 кг/м³, тогда как в контроле – 1,9 кг/м³. Всхожесть семян баклажанов в опыте составила 96,7 %, а в контроле – 95,8 %. Результаты эксперимента представлены в табл. 2.
Таблица 2
Table 2
Показатели роста баклажана сорта «Аметист»
Growth indicators of eggplant of “the Amethyst” variety
|
Время |
Опыт |
Контроль |
||||
|
Длина |
Количество листьев, шт. |
Сырая |
Длина |
Количество листьев, шт. |
Сырая |
|
|
10 |
15,05 ± 0,02a* |
4 |
30,07 ± 0,04b |
12,09 ± 0,03a |
4 |
29,03 ± 0,02b |
|
20 |
17,01 ± 0,05a |
6 |
46,14 ± 0,04b |
16,06 ± 0,02a |
6 |
41,09 ± 0,03b |
|
30 |
23,07 ± 0,05a |
7 |
49,04 ± 0,02b |
19,03 ± 0,03a |
7 |
42,13 ± 0,07b |
|
40 |
31,99 ± 0,04c |
8 |
57,99 ± 0,07b |
31,20 ± 0,24c |
8 |
53,04 ± 0,12b |
|
50 |
42,86 ± 0,32c |
9 |
71,87 ± 0,17b |
41,96 ± 0,05c |
9 |
68,04 ± 0,03b |
|
60 |
52,01 ± 0,07a |
10 |
119,97 ± 0,14b |
52,79 ± 0,18a |
10 |
112,09 ± 0,12b |
* a, b – значения cтатистически значимо различаются при p < 0,01; c – при p < 0,05.
Обработка растений бактериальной культурой способствовала более быстрому развитию растений в опыте по сравнению с контролем. Минимальная средняя длина побега была зафиксирована на 10 сут в контроле – 12,09 см, а максимальная средняя длина – в опыте 15,05 см. Длина стебля по окончании эксперимента в опыте составила 52,01 см, а в контроле – 52,79 см, при этом сырая масса плодов была выше в опыте на 7,03 %. Количество листьев в обеих группах – от 4 до 10 шт. Урожайность в опыте составила 3,1 кг/м3, а в контроле – 2,7 кг/м3.
В рамках проведенного исследования всхожесть семян кабачка в опытной группе составила 98 %, в то время как в контрольной группе – 95 %. Динамика роста растений отражена в табл. 3.
Таблица 3
Table 3
Показатели роста кабачка сорта «Маша F1»
Growth indicators of “the Masha F1” variety
|
Время |
Опыт |
Контроль |
||||
|
Длина |
Количество листьев, шт. |
Сырая |
Длина |
Количество листьев, шт. |
Сырая |
|
|
10 |
15,01 ± 0,08a* |
4 |
30,09 ± 0,14b |
12,11 ± 0,12a |
4 |
29,06 ± 0,09b |
|
20 |
16,91 ± 0,17a |
6 |
46,20 ± 0,17b |
15,99 ± 0,16a |
6 |
41,73 ± 0,47b |
|
30 |
21,81 ± 0,42a |
7 |
40,8 ± 0,27b |
16,24 ± 0,13a |
7 |
41,77 ± 0,20b |
|
40 |
27,91 ± 0,11a |
8 |
50,87 ± 0,20b |
26,00 ± 0,09a |
8 |
48,8 ± 0,14b |
|
50 |
29,79 ± 0,19a |
9 |
81,83 ± 0,14b |
27,84 ± 0,13a |
9 |
82,86 ± 0,18b |
|
60 |
32,20 ± 0,33c |
10 |
100,00 ± 0,13b |
31,07 ± 0,27c |
10 |
96,84 ± 0,26b |
* a, b – значения cтатистически значимо различаются при p < 0,01; c – при p < 0,05.
Установлено, что примененная обработка культуральной жидкостью Seratia ficaria TP3 оказала стимулирующее воздействие на вегетативный рост кабачка. На 10-й день культивации опытная группа демонстрировала статистически значимое увеличение высоты стебля на 23,95 % и сырой массы на 3,54 % по сравнению с контролем. В последующие периоды наблюдения разница в высоте стебля между опытными и контрольными растениями варьировала от 3,64 до 34,3 %. По сырой массе отмечены колебания с переменным преимуществом опытной или контрольной группы. К моменту завершения эксперимента опытные растения превышали контрольные по высоте на 3,73 % и по сырой массе на 3,26 %. Урожайность в опыте составила 3,1 кг/м3, что выше, чем в контроле (2,7 кг/м3), на 14,81 %. Эксперименты по выращиванию клубники, баклажанов и кабачков с добавлением бактериального штамма продолжаются до получения конечной продукции.
Рыба. Тиляпия в течение периода выращивания достигла общего прироста массы в 125,24 г, что в среднем составляет 2,09 г в сутки при среднесуточной скорости роста 0,97 %. Коэффициент накопления массы составил 0,058 ед. В ходе эксперимента погибших рыб не было, выживаемость была 100 %-й. Динамика роста была неравномерной: наиболее активный набор массы происходил в начале выращивания. Так, за первые 20 дней прирост составил 53,81 г, что является значительной долей (42,96 %) от общего прироста за весь период измерения (рис. 2).
Рис. 2. Динамика показателей роста тиляпии Oreochromis mossambicus
Fig. 2. Dynamics of tilapia Oreochromis mossambicus growth indicators
Суточная скорость роста (% в день) изменялась за время выращивания от 0,55 до 1,18 %, коэффициент массонакопления – от 0,033 до 0,099 ед.
В период выращивания растений и рыбы все показатели оставались в пределах допустимых диапазонов. Уровень рН изменялся в бассейне с рыбой от 7,3 до 8,1 ед., в лотке с растениями – от 7,3 до 7,8 ед. Содержание растворенного кислорода в воде у рыб составляло от 7,8 до 8,8 мг/л, а у растений – от 7,9 до 9,0 мг/л. Температура воды соответствовала требованиям для растительных культур и рыб – 25–25,8 ºС (рис. 3).
Рис. 3. Динамика гидрохимических показателей
Fig. 3. Dynamics of hydrochemical indicators
Для обеспечения стабильности аквапонной системы и сохранения здоровья рыб критически важно контролировать такие параметры воды, как аммиак, нитриты и нитраты [12]. Эти соединения, образующиеся в основном из отходов жизнедеятельности рыб и несъеденного корма, должны эффективно перерабатываться и усваиваться, чтобы избежать накопления и нарушения равновесия. Значение уровня азотистых соединений служит индикатором эффективности работы системы. Особую опасность для рыб представляют повышенные концентрации нитритов, в отличие от умеренного роста уровня нитратов. Тиляпия, хотя и способна переносить значительные колебания концентрации нитратов, более уязвима к хроническому воздействию нитритов, которое может привести к проблемам с доставкой кислорода и замедлению роста [13]. Концентрация нитритов в исследуемой воде изменялась в пределах 0,014–0,031 мг/дм³ (рис. 4), что соответствует оптимальным показателям по данным Nadia Z. M. et al. [14] (0,06 мг/л для NO2). Уровень нитратов, напротив, находился в диапазоне 18,5–51,45 мг/дм³, превышая оптимальные значения (<20 мг/л для NO₃), но это не оказало негативного влияния на здоровье рыб, поскольку в аквапонической установке происходит рециркуляция воды для ее непрерывной очистки [15, 16].
Рис. 4. Динамика показателей азотистых соединений
Fig. 4. Dynamics of indicators of nitrogenous compounds
Примечательно, что NO3– не токсичен для рыб и способствует росту растений [1], поскольку растения могут напрямую использовать как аммиачный, так и нитратный азот [17]. Причиной высокого содержания NO3 могут быть низкие плотности посадки растений. В этих условиях растения не могут в полной мере использовать доступный азот, и больше нитратов остается в воде. При проектировании аквапоники малого масштаба низкая плотность посадки растений упрощает управление и снижает трудозатраты, но ограничивает способность системы удалять и восстанавливать питательные вещества. Увеличение плотности посадки растений или включение смеси листовых и плодовых культур, вероятно, улучшит использование нитратов и увеличит общую биомассу [13, 18–20]. Таким образом, сследование роста клубники показало значительные различия в количестве листьев, длине побегов, свежей массе и урожайности (г) между вариантами.
Заключение
Проведены эксперименты по выращиванию в аквапонической установке ЮНЦ РАН растительных культур с длинным вегетационным циклом (баклажан, клубника, кабачок) от момента всхода до получения зеленой массы и 150 экз. мозамбикской тиляпии (Oreochromis mossambicus) средней массой 160 г, общая биомасса рыбы составила 24 000 г на 1 м3. В ходе эксперимента выявили влияние штамма Serratia ficaria TP3 на стимуляцию роста семян в опыте. Показано, что все культуры (кроме баклажана) имели большую всхожесть семян и рост стебля, чем в контроле.
1. Wongkiew S., Hu Zh., Chandran K., Lee J. W., Khanal S. K. Nitrogen transformations in aquaponic systems: A review // Aquacultural Engineering. 2017. V. 76. P. 9–19. DOI /10.1016/j.aquaeng.2017.01.004.
2. Wongkiew S., Hu Zh., Lee Ja. W., Chandran K., Nhan H. T., Marcelino K. R., Khanal S. K. Nitrogen Recovery via Aquaponics–Bioponics: Engineering Considerations and Perspectives // ACS ES&T Engineering. 2021. V. 1. N. 3. P. 326–339. DOIhttps://doi.org/10.1021/acsestengg.0c00196.
3. Ромашова Ю. А., Дельмухаметов А. Б. Совместное выращивание австралийского красноклешневого рака и микрозелени в аквапонной установке // Изв. КГТУ. 2025. № 76. С. 38–51.
4. Ромашова Ю. А., Дельмухаметов А. Б. Совместное выращивание гидробионтов и растений как перспективное направление развития индустриальной аквакультуры // Интеллектуальный потенциал молодых ученых как драйвер развития АПК: материалы Междунар. науч.-практ. конф. молодых ученых и обучающихся (Санкт-Петербург – Пушкин, 24–26 марта 2021 г.). СПб.: Изд-во Санкт-Петерб. гос. аграр. ун-та, 2021. Т. 1. С. 260–262.
5. Сыздыков К. Н., Куржыкаев Ж. К., Нарбаев С. Н., Григорьев Б. Н., Куанчалеев Ж. Б., Марленов Э. Б. Рыбоводные показатели рыб при выращивании в аквапонике // Вестн. науки Казах. агротехн. ун-та им. С. Сейфуллина. 2017. № 3 (94). С. 53–59.
6. Спотт С. Содержание рыбы в замкнутых системах. М.: Лег. и пищ. пром-сть, 1983. 192 с.
7. Матишов Г. Г., Пономарева Е. Н., Казарникова А. В. Инновационная биотехнология получения экологически чистой продукции аквабиокультуры в модульной установке замкнутого водоснабжения // Изв. высш. учеб. заведений. Сев.-Кавказ. регион. Сер.: Естественные науки. 2016. № 3 (191). С. 41–48.
8. Зыкина Е. А. Установки замкнутого водоснабжения – будущее современной аквакультуры // Сурский вестн. 2023. № 4 (24). С. 14–19.
9. Старикова Т. С. Экосистемный подход в повышении эффективности индустриальной технологии получения экологически чистой продукции в аквакультуре: дис. … канд. с.-х. наук. Астрахань, 2022. 146 с.
10. Subramanian R., Nair C. S., Manoharan R., Nishanth D., El-Haroun E., Jaleel A. Integrated nutrient and feeding optimization strategies in aquaponics for sustainable urban food production and water conservation // Front. Sustain. Food Syst. 2025. V. 9. P. 1681782. DOIhttps://doi.org/10.3389/fsufs.2025.1681782.
11. Щербина М. А., Гамыгин Е. А. Кормление рыб в пресноводной аквакультуре. М.: Изд-во ВНИРО, 2006. 360 с.
12. Tawaha A. R., Wahab P. E. M., Jaafar H. B., Zuan A. T. K., Hassan M. Z. Effects of fish stocking density on water quality, growth performance of Nile tilapia and yield of butterhead lettuce grown in decoupled recirculation aquaponic systems // J. Ecol. Eng. 2020. V. 22 (1). P. 8–19. DOIhttps://doi.org/10.12911/22998993/128692.
13. Al-Kharusi A., Gallardo W., Al-Souti A. Perfor-mance of floating and media-based aquaponic systems with two tank sizes for Nile tilapia and cherry tomato // Aquaculture Reports. 2026. V. 46. P. 103384. DOI /10.1016/ j.aqrep.2026.103384.
14. Nadia Z. M., Akhi A. R., Roy P., Farhad F. B., Hossain M. M., Salam Md. A. Yielding of aquaponics using probiotics to grow tomatoes with tilapia // Aquaculture Reports. 2023. V. 33. P. 101799. DOIhttps://doi.org/10.1016/j.aqrep.2023.101799.
15. Setiadi E., Taufik I., Widyastuti Y. R., Ardi I., Pus-paningsih D. Improving productivity and water quality of catfish, Clarias sp. cultured in an aquaponic ebb-tide system using different filtration // IOP Conf. Ser.: Earth Environ. 2019. Sci. 236. Art. 012026. DOIhttps://doi.org/10.1088/1755-1315/236/1/012026.
16. Shamsuddin M., Hossain M. B., Rahman M., Kawla M. S., Shufol M. B. A., Rashid M. M., Asadujjaman M., Rakib M. R. J. Application of biofloc technology for the culture of Heteropneustes fossilis (Bloch) in Bangladesh: stocking density, floc volume, growth performance, and profitability // Aquac. Int. 2022. V. 30. P. 1047–1070. DOIhttps://doi.org/10.1007/s10499-022-00849.
17. Gao X., Ya Xu., Shan J., Jiang J., Zhang H., Ni Qi, Zhang Y. Effects of different stocking density start-up conditions on water nitrogen and phosphorus use efficiency, production, and microbial composition in aquaponics systems // Aquaculture. 2024. V. 585. P. 740696. DOIhttps://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2024.740696.
18. Liang Y., Chien Y. H. Effects of feeding frequency and photoperiod on water quality and crop production in a Nile tilapia–water spinach raft aquaponics system // Int. Biodeterior. Biodegrad. 2013. V. 85. P. 693–700. DOIhttps://doi.org/10.1016/j.ibiod.2013.03.029.
19. Hasan Z., Dhahiyat Y., Andriani Y., Sahidin A., Farizi I. Impact of Red Water System (RWS) application on water quality of catfish culture using aquaponics // IOP Conf. Ser.: Earth Environ. 2018. Sci. 139. Art. 012009. DOIhttps://doi.org/10.1088/1755-1315/139/1/012009.
20. Nuwansi K. K., Verma A. K., Chandrakant M. H., Prabhath G. P. W. A., Peter R. M. Optimization of stocking density of koi carp (Cyprinus carpio var. koi) with gotukola (Centella asiatica) in an aquaponic system using phytoremediated aquaculture wastewater // Aquaculture. 2021. V. 532. Art. 735993. DOIhttps://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2020.735993.
